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4.5: Preguntas posteriores al laboratorio - Biología

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4.5: Preguntas posteriores al laboratorio

Laboratorio de biologia

1. ¿Qué debe usar siempre para proteger sus ojos cuando esté en el laboratorio de química?

Siempre se deben usar anteojos de seguridad o gafas de seguridad dentro de un laboratorio de química para proteger sus ojos.

2. ¿Debería agregar ácido al agua o agua al ácido?

3. ¿Dónde debería desechar los cristales rotos?

Deben colocarse en el recipiente adecuado para la eliminación de objetos punzantes. Nunca deben tirarse a un bote de basura normal.

4. ¿Qué debe hacer si se derrama una sustancia química en la mano?

Debe lavarse las manos inmediatamente con abundante agua y jabón antibacteriano.

Un laboratorio químico contiene equipo especial para usar mientras realiza un experimento. Ubique cada uno de los elementos que se muestran en las siguientes páginas en su equipo de laboratorio y coloque una marca de verificación en el lugar apropiado cuando lo encuentre. Una vez que haya completado esto, haga un bosquejo de una imagen y nombre cualquier elemento adicional que se encuentre en su equipo de laboratorio, salón de clases u hogar que probablemente le resulten útiles para completar estos laboratorios.

Probeta graduada ___x______ de 250 mL

image9.png100 mL __x_______

Tubo de ensayo ___x______ Pipeta ___x______ Placa de Petri ___x______

Incluya sus dibujos aquí:

Experimento 1: neutralización de ácidos y bases

image12.jpg En este experimento, aprenderá a neutralizar y eliminar adecuadamente las soluciones ácidas y básicas.

5 ml de ácido acético al 4,5% (vinagre), C2H4O2 (1) Cilindro graduado de 10 ml 8 tiras reactivas de tornasol (neutras) Marcador permanente 2 pipetas 1 g de bicarbonato de sodio (bicarbonato de sodio), NaHCO3

1. Utilice el marcador permanente para etiquetar tres de los botes de pesaje como A & # 8211 C.

2. Mida y vierta aproximadamente 5 ml de agua en el bote de pesaje & # 8220A & # 8221.

3. Agregue 0,5 g de bicarbonato de sodio para pesar el bote & # 8220B & # 8221.

4. Mida y vierta aproximadamente 5 ml de agua en el bote de pesaje & # 8220B & # 8221. Pipetee suavemente la solución hacia arriba y hacia abajo hasta que el bicarbonato de sodio se disuelva por completo en el agua.

5. Mida y vierta 5 ml de solución de ácido acético para pesar el bote & # 8220C & # 8221.

6. Utilice las tiras reactivas de tornasol para determinar si las sustancias en los botes de pesaje A & # 8211 C son ácidas o básicas. Esto se logra sumergiendo brevemente una tira sin usar del papel tornasol en cada uno de los botes de pesaje. Registre sus resultados de color en la Tabla 2.

7. Pipetee 1 mL de la solución de bicarbonato de sodio del bote de pesaje & # 8220B & # 8221 en el bote de pesaje & # 8220C & # 8221. Remolque suavemente el bote de pesaje & # 8220C & # 8221 para mezclar.

8. Desarrolle y registre una hipótesis con respecto al pH del bote de pesaje “C”. Registre esto en la sección Preguntas posteriores al laboratorio.

9. Pruebe el pH del bote de pesaje & # 8220C & # 8221 usando papel tornasol nuevo. Registre su resultado en la Tabla 3.

10. Repita el Paso 9 cuatro veces más hasta que se haya agregado todo el bicarbonato de sodio para pesar el bote “C”.

Tabla 2: Resultados iniciales de la prueba de tornasol

Tabla 3: Neutralización de un ácido

1. Exprese su hipótesis (desarrollada en el Paso 8) aquí. Asegúrese de incluir cuál cree que será el pH y por qué.

2. ¿Qué es una reacción de neutralización?

3. ¿Cuándo se pueden utilizar las reacciones de neutralización en un entorno de laboratorio?

4. ¿En qué punto se neutralizó el ácido acético en el bote de pesaje “C”?

5. ¿Cuáles cree que habrían sido los resultados si se hubiera usado una solución más fuerte de bicarbonato de sodio? ¿Haría falta más o menos para neutralizar el ácido? ¿Qué pasa con una concentración más débil de bicarbonato de sodio?

1. Enumere los números atómicos de cada uno de los siguientes elementos.

2. ¿Qué determina si un enlace es polar?

3. Utilice la tabla periódica para determinar si el cloruro de potasio (KCl) se formó a través de enlaces covalentes o iónicos. Utilice evidencia de la Introducción para respaldar su respuesta.

4. Investigue dos moléculas polares comunes y dos moléculas apolares comunes. Dibuja su estructura molecular y explica cómo la estructura hace que cada molécula sea polar o no polar.

image13.jpg Las tintas pueden ser polares o no polares. Los disolventes polares recogen tintas polares, mientras que los disolventes no polares recogen tintas no polares. En este experimento, usará tintas para identificar el limo y la masilla tonta como polar o no polar. También utilizará cromatografía en papel para verificar que las tintas estén correctamente identificadas como polares o no polares.

(1) Vaso de precipitados de 250 ml 5 ml de solución de bórax al 4%, Na2B4O7 · Marcador de borrado en seco 10H2O (1) Cilindro graduado de 10 ml (1) Cilindro graduado de 100 ml Papel de filtro (disco) Papel de filtro (cuadrado) 0,5 g Marcador permanente de resaltador de goma guar 1 palito de helado

Regla Silly Putty® Palo de madera para revolver Uni-ball® Roller Pen * Agua destilada o del grifo * Periódico * Papel de cuaderno * Tijeras * Usted debe proporcionar

1. Pese 0,5 g de goma guar en un vaso de precipitados de 250 ml.

2. Mida 50,0 mL de agua destilada en un cilindro graduado de 100 mL y viértalo en el vaso de precipitados de 250 mL que contiene la goma guar.

3. Revuelva rápidamente la mezcla con una varilla de madera durante tres minutos o hasta que se disuelva la goma guar.

4. Mida 4,00 ml de una solución de bórax al 4% en un cilindro graduado de 10 ml y agréguelo a la goma guar y al agua.

5. Revuelva la solución hasta que se convierta en una baba. Esto tomará unos pocos minutos. Si la baba permanece demasiado líquida, agregue 1.0 ml más de la solución de bórax al 4.0% y continúe revolviendo hasta que la baba esté un poco líquida o pegajosa.

6. Una vez que esté satisfecho con el slime, viértalo en sus manos. Asegúrese de no dejar caer nada al suelo.

7. Manipula la baba en tus manos. Escriba las observaciones realizadas sobre cómo se vierte, se estira, se rompe, etc. el limo en la Parte 1 de la sección Datos. PRECAUCIÓN: El slime es resbaladizo y si se cae puede hacer que el área de trabajo esté resbaladiza.

8. Vuelva a colocar la baba en el vaso de precipitados y LÁVESE LAS MANOS.

Parte 2: Pruebas de tinta con limo y masilla

1. En una hoja de papel de cuaderno, haga una marca de 20 & # 8211 25 mm de largo de cada una de las tintas que está probando (marcador permanente, resaltador, Borrado en seco y Uni-ball® Roller Pen). Separe las marcas al menos a una pulgada de distancia. Use un lápiz para etiquetar cada marca con su descripción.

una. Las tintas solubles en agua incluyen las de los resaltadores y ciertos bolígrafos.

B. Las tintas insolubles en agua incluyen las de rotuladores / rotuladores permanentes, papel de periódico y rotuladores de borrado en seco.

2. Mientras se secan las tintas, seleccione un pasaje o una imagen en el periódico para probar con la baba.

3. Desarrolle una hipótesis que indique si cree o no que el limo producido en la Parte 1 absorberá la tinta del papel de periódico. Registre esta hipótesis en la sección Preguntas posteriores al laboratorio. Luego, rompa un pequeño trozo de baba de 3 & # 8211 5 cm de diámetro. Coloque suavemente esta pieza sobre la impresión del periódico, luego recójala con cuidado nuevamente.

4. Observe y registre en la Tabla 1 si la tinta se incorporó al fango o no.

5. Rompa otro pequeño trozo de baba. Una vez que las tintas del Paso 1 se hayan secado, coloque suavemente la baba en la parte superior del primer lugar en el papel del cuaderno, luego recójala con cuidado. Repita esto para cada una de las tintas. Observe y registre qué tintas fueron recogidas (disueltas) por el limo en la Tabla 1.

6. Repita esta prueba de tinta dos veces más para mayor precisión.

7. Haga una hipótesis sobre qué tintas captará la masilla tonta en la Parte 2 de la sección de Datos. Luego, realice las pruebas de tinta con Silly Putty® de acuerdo con el procedimiento descrito en los Pasos 5 y # 8211 6.

Parte 3: Cromatografía de muestras de tinta

Figura 7: Aparato de cromatografía para el procedimiento de la parte 3.

1. Utilice un lápiz o unas tijeras para hacer un pequeño agujero en el centro de un trozo de papel de filtro (consulte la Figura 7).

2. Coloque el papel de filtro a una distancia uniforme de aproximadamente 2 cm del orificio pequeño con las dos tintas insolubles y las dos tintas solubles que se utilizaron en la Parte 2, Paso 1.

3. Obtenga ½ pieza de papel de filtro. Dobla el papel por la mitad varias veces para que forme una mecha estrecha.

4. Inserte la mecha en el orificio del papel manchado de modo que quede por encima de la parte superior del papel de filtro aproximadamente 2 cm.

5. Llene un vaso de precipitados de 250 ml ¾ de agua.

6. Coloque el papel de filtro en la parte superior del vaso de manera que la parte inferior de la mecha esté en el agua. El papel debe colgar sobre el borde del vaso de precipitados con el lado manchado hacia arriba.

7. Deje que el agua viaje hasta que esté aproximadamente a 1 cm del borde del papel de filtro. Retire el papel de filtro del vaso de precipitados.

8. Observe qué tintas se movieron desde donde se vieron originalmente. Registre sus observaciones en la Parte 3 de la sección de Datos.

Tabla 1: Resultados de las pruebas de tinta para Silly Putty®

· Hipótesis para Silly Putty® (Procedimiento Parte 2, Paso 7):

· Observaciones de tintas tras cromatografía:

1. Registre su hipótesis sobre la capacidad del limo para recoger tinta de papel de periódico aquí.

2. ¿El limo recogió tintas solubles en agua o insolubles en agua? A partir de estos resultados, ¿qué puede concluir acerca de la polaridad de las moléculas de limo?

3. Explica cómo determinaste tu hipótesis sobre si la masilla tonta recogería tintas solubles en agua. ¿Fue correcta tu hipótesis?

4. ¿Las tintas que utilizó se clasificaron correctamente como solubles e insolubles? Explica tu respuesta.

1. La fijación de nitrógeno es un proceso natural mediante el cual las formas inertes o no reactivas de nitrógeno se transforman en nitrógeno utilizable. ¿Por qué este proceso es importante para la vida?

2. Teniendo en cuenta lo que ha aprendido acerca de los enlaces de hidrógeno compartidos entre los ácidos nucleicos en el ADN, ¿qué par es más estable bajo calor creciente: adenina y timina, o citosina y guanina? Explicar por qué.

3. ¿Cuál de las siguientes no es una molécula orgánica de metano (CH4), fructosa (C6H12O6), rosano (C20H36) o amoníaco (NH3)? ¿Cómo lo sabes?

Experimento 1: Prueba de proteínas

Las moléculas de proteínas de muchos alimentos proporcionan los componentes básicos de los aminoácidos que necesitan nuestras propias células para producir nuevas proteínas. Para determinar si una muestra contiene proteína, se utiliza un reactivo llamado solución de Biuret. La solución de biuret contiene iones de cobre. Sin embargo, el estado químico de los iones de cobre en la solución de Biuret hace que formen un complejo químico con los enlaces peptídicos entre los aminoácidos (cuando están presentes), cambiando el color de la solución. La solución de biuret es normalmente azul, pero cambia a rosa cuando están presentes péptidos cortos y a violeta cuando están presentes polipéptidos largos.

Figura 6: La solución de Biuret solo se encuentra en el extremo izquierdo de la imagen (azul). Tenga en cuenta la transición de azul a violeta a medida que se agregan proteínas a la solución, lo que hace que la solución cambie de azul a violeta.

(2) Vasos de precipitados de 250 ml Solución de biuret de 25 gotas, H2NC (O) NHC (O) NH (1) Paquete de gelatina Knox® 5 ml Solución de glucosa al 1%, C6H12O6 (1) Cilindro graduado de 10 ml (1) Cilindro graduado de 100 ml Permanente Marcador 5 pipetas

5 tubos de ensayo (plástico) Gradilla para tubos de ensayo 5 ml Solución desconocida * Agua del grifo * Agua caliente * Clara de huevo * Debe proporcionar

1. Etiquete cinco tubos de ensayo 1, 2, 3, 4 y 5.

2. Prepare sus muestras de prueba de la siguiente manera:

una. Mezcle una clara de huevo con 25 ml de agua en un vaso de precipitados de 250 ml para crear una solución de albúmina. Pipetee 5 ml de esta solución en el tubo de ensayo 1.

B. Mezcle el paquete de gelatina Knox® con 50 ml de agua caliente en un segundo vaso de precipitados de 250 ml. Revuelva hasta que se disuelva. Pipetee 5 ml de esta solución en el tubo de ensayo 2.

3. Pipetee 5 ml de la solución de glucosa al 1% en el tubo de ensayo 3.

4. Utilice la probeta graduada de 10 ml para medir y vierta 5 ml de agua en el tubo de ensayo 4.

5. Pipetee 5 ml de la "Solución desconocida" en el tubo de ensayo 5.

6. Registre el color inicial de cada muestra en la Tabla 1.

7. Desarrolle una hipótesis con respecto a lo que predice que sucederá cuando se agregue la solución de Biuret a los Tubos 1 & # 8211 4. Registre su hipótesis en la sección Preguntas posteriores al laboratorio. Luego, pipetee cinco gotas de solución de Biuret en cada tubo de ensayo (1 y # 8211 5). Gire cada tubo para mezclar.

8. Registre el color final en la Tabla 1. Nota: La proteína está presente en la muestra si se observa un color violeta claro.

Tabla 1: Prueba de los resultados de las proteínas

1. Registre su hipótesis sobre lo que sucederá cuando la solución de Biuret se mezcle con las soluciones de los tubos de ensayo 1, 2, 3 y 4 aquí. Asegúrese de utilizar el razonamiento científico para respaldar su hipótesis.

2. Escriba una declaración para explicar la composición molecular de la solución desconocida basada en los resultados obtenidos durante la prueba con cada reactivo.

3. La dieta y la nutrición están íntimamente ligadas al estudio de las biomoléculas. ¿Cómo debe controlar su ingesta de alimentos para asegurarse de que las células de su cuerpo tengan los materiales necesarios para funcionar?

4. La molécula que se muestra a continuación produjo un color azul cuando se probó con el reactivo de Benedict, un color amarillo cuando se probó con IKI y un color violeta cuando se probó con el reactivo de Biuret. Según la estructura que se muestra a continuación y estos resultados químicos, ¿qué tipo de biomolécula es esta?

1. Un gradiente de concentración afecta la dirección en la que se difunden los solutos. Describe cómo se mueven las moléculas con respecto a la concentración.

2. ¿Cómo afecta el tamaño de un soluto a la velocidad de difusión? Considere el tamaño y la forma de una molécula en su respuesta.

3. ¿La polaridad afecta la difusión? Explica tu respuesta usando principios científicos.

Experimento 1: difusión a través de un líquido

image15.jpg En este experimento, observará el efecto que tienen los diferentes pesos moleculares sobre la capacidad del tinte para viajar a través de un medio viscoso.

1 botella de jarabe de maíz de 60 ml, soluciones de colorante rojo y azul C12H22O11 (peso molecular azul = 793 g / mol Peso molecular rojo = 496 g / mol) (1) Placa Petri de 9 cm (mitades superior e inferior n. ° 038)

Regla * Cronómetro * Cinta * Debe proporcionar

1. Use cinta adhesiva transparente para asegurar la mitad (ya sea la mitad inferior o la mitad superior) de la placa de Petri sobre una regla. Asegúrese de que puede leer las marcas de medición en la regla a través de la placa de Petri. El plato debe colocarse con el extremo abierto del plato hacia arriba.

2. Llene con cuidado la mitad de la placa de Petri con jarabe de maíz hasta cubrir toda la superficie.

3. Desarrolle una hipótesis discutiendo qué tinte cree que se difundirá más rápidamente a través del jarabe de maíz y por qué. Registre esto en la sección Preguntas posteriores al laboratorio. Luego, coloque una sola gota de tinte azul en el medio del jarabe de maíz. Observe la posición donde cayó el tinte leyendo la ubicación del borde exterior del tinte en la regla.

4. Registre la ubicación del borde exterior del tinte (la distancia que ha viajado) cada diez segundos durante un total de dos minutos. Registre sus datos en las Tablas 1 y 2.

5. Repita los pasos 1 y # 8211 4 usando el tinte rojo, la segunda mitad de la placa de Petri y jarabe de maíz fresco.

Tabla 1: Tasa de difusión en jarabe de maíz

Tabla 2: Velocidad de difusión de colorantes de diferentes pesos moleculares

Distancia total recorrida (mm)

* Multiplique la distancia total difundida por 30 para obtener la tasa de difusión por hora

1. Registre su hipótesis del Paso 3 aquí. Asegúrese de validar sus predicciones con razonamiento científico.

2. ¿Qué tinte se difundió más rápido?

3. ¿Se corresponde la velocidad de difusión con el peso molecular del tinte?

4. ¿La tasa de difusión cambia con el tiempo? ¿Por qué o por qué no?

5. Examine el siguiente gráfico. ¿Coincide con los datos que registró en la Tabla 2? Explica por qué o por qué no. Envíe su propia parcela si es necesario.

Experimento 2: gradientes de concentración y permeabilidad de la membrana

En este experimento, dializará una solución de glucosa y almidón para observar:

· El movimiento direccional de la glucosa y el almidón.

· El efecto de una membrana selectivamente permeable sobre la difusión de estas moléculas.

image16.jpg Un indicador es una sustancia que cambia de color cuando está en presencia de la sustancia que indica. En este experimento, se utilizará IKI como indicador para probar la presencia de almidón y glucosa.

(5) Vasos de precipitados de 100 ml 10 ml de solución de glucosa al 1%, C6H12O6 4 tiras reactivas de glucosa (1) Cilindro graduado de 100 ml 4 ml de yoduro de potasio y yodo al 1%, IKI 5 ml de almidón líquido, C6H10O5 3 pipetas 4 bandas de goma (pequeñas contienen látex , manipular con guantes si es alérgico)

* Cronómetro * Agua * Tijeras * Tubo de diálisis de 15,0 cm * Debe proporcionar * Asegúrese de medir y cortar solo la longitud que necesita para este experimento. Reserve el resto para experimentos posteriores.

No permita que el extremo abierto del tubo de diálisis caiga en el vaso de precipitados. Si es así, retire el tubo y enjuague bien con agua antes de volver a llenarlo con una solución de almidón / glucosa y volver a colocarlo en el vaso de precipitados.

· El tubo de diálisis se puede enjuagar y volver a utilizar si comete un error.

· El tubo de diálisis debe empaparse en agua antes de que pueda abrirlo para crear la & # 8220bag & # 8221 de diálisis. Siga las instrucciones del experimento, comenzando por remojar el tubo en un vaso de precipitados con agua. Luego, coloque el tubo de diálisis entre el pulgar y el índice y frote los dos dedos de manera cortante. Esto debería abrir el & # 8220tube & # 8221 para que pueda llenarlo con las diferentes soluciones.

1. Mida y vierta 50 mL de agua en un vaso de precipitados de 100 mL. Corte un trozo de tubo de diálisis de 15,0 cm de largo. Sumerja el tubo de diálisis en el agua durante al menos 10 minutos.

2. Mida y vierta 82 mL de agua en un segundo vaso de precipitados de 100 mL. Este es el vaso de precipitados en el que colocará la bolsa de diálisis llena en el Paso 9.

3. Mientras la bolsa de diálisis todavía está en remojo, prepare la mezcla de glucosa / sacarosa. Use una pipeta graduada para agregar cinco ml de solución de glucosa a un tercer vaso de precipitados y etiquételo como "Solución de bolsa de diálisis". Utilice una pipeta graduada diferente para agregar cinco ml de solución de almidón al mismo vaso de precipitados. Mezcle pipeteando la solución arriba y abajo de la pipeta seis veces.

4. Con la misma pipeta que utilizó para mezclar la solución de la bolsa de diálisis, extraiga dos ml de esa solución y colóquelos en un vaso de precipitados limpio. Esta muestra le servirá como control positivo de glucosa y almidón.

una. Sumerja una de las tiras reactivas de glucosa en los dos ml de solución de glucosa / almidón del tercer vaso de precipitados. Después de que haya pasado un minuto, registre el color final de la tira reactiva de glucosa en la Tabla 3. Este es su control positivo de glucosa.

B. Utilice una pipeta para transferir aproximadamente 0,5 ml de IKI a los dos ml de solución de glucosa / almidón en el tercer vaso de precipitados. Después de que haya pasado un minuto, registre el color final de la solución de glucosa / almidón en el vaso de precipitados en la Tabla 3. Este es su control positivo para el almidón.

5. Con una pipeta limpia, extraiga dos ml de agua de los 82 ml de agua que colocó en un vaso de precipitados en el paso 2 y colóquelo en un vaso de precipitados limpio. Esta muestra le servirá como control negativo de glucosa y almidón.

una. Sumerja una de las tiras reactivas de glucosa en los dos ml de agua del vaso de precipitados. Después de que haya pasado un minuto, registre el color final de la tira reactiva de glucosa en la Tabla 3. Este es su control negativo de glucosa.

B. Utilice una pipeta para transferir aproximadamente 0,5 ml de IKI a los dos ml de agua del vaso de precipitados. Después de que haya pasado un minuto, registre el color final del agua en el vaso de precipitados en la Tabla 3. Este es su control negativo para el almidón.

Nota: Los resultados de color de estos controles determinan la clave de reactivo indicador. Debe utilizar estos resultados para interpretar el resto de sus resultados.

6. Después de que hayan pasado al menos 10 minutos, retire el tubo de diálisis y cierre un extremo doblando 3,0 cm de un extremo (parte inferior). Dóblalo de nuevo y asegúralo con una banda elástica (usa dos bandas elásticas si es necesario).

7. Asegúrese de que el extremo cerrado no permita que se escape la solución. Puede probar esto secando el exterior de la bolsa de diálisis con un paño o una toalla de papel, agregando una pequeña cantidad de agua a la bolsa y examinando el sello de la goma elástica en busca de fugas. Asegúrese de quitar el agua del interior de la bolsa antes de continuar.

8. Con la misma pipeta que se utilizó para mezclar la solución en el paso 3, transfiera ocho ml de la solución del vaso de precipitados de solución de la bolsa de diálisis a la bolsa de diálisis preparada.

Figura 4: Referencia del paso 9.

9. Coloque el tubo de diálisis lleno en un vaso de precipitados con 80 ml de agua con el extremo abierto sobre el borde del vaso de precipitados, como se muestra en la Figura 4.

10. Deje que la solución repose durante 60 minutos. Limpiar y secar todos los materiales excepto el vaso de precipitados con la bolsa de diálisis.

11. Después de que la solución se haya difundido durante 60 minutos, retire el tubo de diálisis del vaso de precipitados y vacíe el contenido en un vaso de precipitados limpio y seco. Etiquételo como solución de bolsa de diálisis.

12. Pruebe la solución de la bolsa de diálisis para detectar la presencia de glucosa y almidón. Pruebe la presencia de glucosa sumergiendo una tira reactiva de glucosa en la bolsa de diálisis directamente. Nuevamente, espere un minuto antes de leer los resultados de las tiras reactivas. Registre sus resultados para la presencia de glucosa y almidón en la Tabla 4. Pruebe la presencia de almidón agregando dos ml de IKI. Registre el color final en la Tabla 4 después de que haya pasado un minuto.

13. Analice la solución en el vaso de precipitados en busca de glucosa y almidón. Utilice una pipeta para transferir ocho ml de la solución del vaso de precipitados a un vaso de precipitados limpio. Pruebe la presencia de glucosa sumergiendo una tira reactiva de glucosa en el vaso de precipitados. Espere un minuto antes de leer los resultados de la tira reactiva y registre los resultados en la Tabla 4. Agregue dos ml de IKI al agua del vaso y registre el color final de la solución del vaso en la Tabla 4.

Tabla 3: Datos del reactivo indicador

Control positivo de almidón (color)

Control negativo de almidón (color)

Control positivo de glucosa (color)

Control negativo de glucosa (color)

Tabla 4: Difusión de almidón y glucosa a lo largo del tiempo

Bolsa de diálisis después de 1 hora

Agua del vaso de precipitados después de 1 hora

1. ¿Por qué es necesario tener controles positivos y negativos en este experimento?

2. Dibuja un diagrama de la configuración experimental. Utilice flechas para representar el movimiento de cada sustancia en la bolsa de diálisis y el vaso de precipitados.

3. ¿Qué sustancia (s) atravesó la membrana de diálisis? Respalde su respuesta con evidencia basada en datos.

4. ¿Qué moléculas quedaron dentro de la bolsa de diálisis?

5. ¿Se difundieron todas las moléculas de la bolsa al vaso de precipitados? ¿Por qué o por qué no?


INTRODUCCIÓN

La identificación y el uso de plantas medicinales son componentes importantes de la salud y el bienestar de diversas poblaciones del mundo en desarrollo. Además, las plantas que tienen propiedades antibacterianas son cada vez más relevantes en una época en la que los profesionales de la salud están documentando una creciente resistencia a los antibióticos entre las bacterias patógenas. Moringa oleifera (moringa) es un árbol originario de la India y se ha utilizado tanto como suplemento nutricional como planta medicinal (1 & # x020135). Según nuestra propia investigación (no publicada) y la de varios otros grupos (4, 6 & # x020138), los extractos de hojas, semillas y raíces de moringa muestran propiedades antibacterianas. Allium sativum (ajo) también se ha demostrado que exhibe cualidades antibacterianas (9, 10). Estos efectos inhibidores pueden demostrarse fácilmente en un ejercicio de laboratorio instructivo y muy visual.

Se pueden usar varios métodos para determinar los efectos antibacterianos de diferentes sustancias, pero el método de difusión en disco (11) es una de las técnicas disponibles más rentables, sencillas y visualmente impactantes. Este método proporciona resultados claros que los estudiantes que realizan el experimento pueden observar e interpretar fácilmente. En este documento, describimos una actividad de laboratorio en la que se instruyó a los estudiantes sobre cómo extraer compuestos antibacterianos de plantas, colocar bacterias en placa aséptica y probar los extractos para determinar la actividad antibacteriana. Después de un período de incubación de 24 horas, los estudiantes analizaron sus resultados y recopilaron datos sobre el efecto inhibidor de los extractos de plantas probados sobre el crecimiento de bacterias grampositivas y gramnegativas.

Los estudiantes recibieron un cuestionario idéntico sin previo aviso inmediatamente antes (antes del laboratorio) y una semana después (después del laboratorio) de la actividad de laboratorio para evaluar si su comprensión de los conceptos y procedimientos mejoró después de realizar el ejercicio de laboratorio. Los estudiantes también proporcionaron una evaluación de la actividad del laboratorio al completar una encuesta posterior al laboratorio.

Público objetivo

Debido a su naturaleza multidisciplinaria, combinando conceptos tanto de microbiología como de biología vegetal, esta actividad de laboratorio es apropiada para una variedad de cursos de biología de pregrado. Estos pueden incluir cursos de primer año de & # x0201cPrinciples of Biology & # x0201d, biología vegetal (botánica), microbiología general y microbiología médica. También sería una actividad adecuada para cualquier curso que aborde plantas medicinales, biología de la conservación o agricultura tropical.

Conocimientos previos del estudiante

Los estudiantes de pregrado que hayan completado con éxito los cursos de biología de la escuela secundaria deben tener conocimientos previos suficientes para realizar esta actividad, suponiendo que también se proporcione una conferencia previa al laboratorio que cubra los conceptos básicos de cultivo bacteriano y estructura celular (grampositivos versus gramnegativos) (ver & # x0201c Instrucciones para profesores & # x0201d). Además, se espera que los estudiantes hayan cumplido con los requisitos de seguridad de laboratorio del curso, que deben incluir la cobertura de las pautas para el uso de organismos de nivel de bioseguridad (BSL) 1 (consulte & # x0201cCuestiones de seguridad & # x0201d). A partir de su capacitación completa, los estudiantes tendrán un conocimiento básico del crecimiento microbiano y el control del crecimiento y competencia en el manejo seguro de microorganismos vivos, incluido el uso de técnicas asépticas y la eliminación adecuada de materiales de riesgo biológico. Los instructores deben revisar estos conceptos durante la explicación y demostración previa al laboratorio.

Tiempo de aprender

Para completar esta actividad, es necesario un período de laboratorio de dos horas para recolectar los extractos de plantas, frotar placas estériles de agar Mueller-Hinton con los cultivos bacterianos provistos y colocar el extracto de planta y los discos con infusión de antibiótico en las placas para su incubación a 37 ° C. # x000b0C. Después de una incubación de 24 horas, los estudiantes deben recolectar inmediatamente los resultados experimentales o los cultivos en placa deben refrigerarse a 4 & # x000b0C para la recolección de datos en el próximo período de laboratorio. Los estudiantes deben poder medir e interpretar sus resultados en 15 a 30 minutos.

Objetivos de aprendizaje

Después de completar con éxito este ejercicio de laboratorio, los estudiantes podrán:

Extraer productos solubles en agua de plantas de potencial valor medicinal y determinar su actividad antibacteriana.

Establecer cultivos bacterianos en placas de Petri mediante técnica aséptica.

Cuantifique los efectos antibacterianos de extractos de plantas y antibióticos conocidos identificando, midiendo y comparando zonas de inhibición del crecimiento en un cultivo en placa bacteriana.

Compare los efectos inhibidores del crecimiento de extractos de plantas y antibióticos conocidos en una bacteria grampositiva versus una gramnegativa.

Formular una hipótesis para explicar la función de los productos antimicrobianos en las plantas.

Articular los usos potenciales de las plantas para combatir infecciones bacterianas.


Tarea: Preguntas previas al laboratorio

Siempre se deben usar anteojos de seguridad o gafas de seguridad dentro de un laboratorio de química para proteger sus ojos.

2. ¿Debería agregar ácido al agua o agua al ácido?

3. ¿Dónde debería desechar los cristales rotos?

Deben colocarse en el recipiente adecuado para la eliminación de objetos punzantes. Nunca deben tirarse a un bote de basura normal.

4. ¿Qué debe hacer si se derrama un químico en su mano?

Debe lavarse las manos inmediatamente con abundante agua y jabón antibacteriano.

Ejercicio 1: ¿Qué es?

Un laboratorio químico contiene equipo especial para usar mientras realiza un experimento. Ubique cada uno de los elementos que se muestran en las siguientes páginas en su equipo de laboratorio y coloque una marca de verificación en el lugar apropiado cuando lo encuentre. Una vez que haya completado esto, haga un bosquejo de una imagen y nombre cualquier elemento adicional que se encuentre en su equipo de laboratorio, salón de clases u hogar que probablemente le resulten útiles para completar estos laboratorios.

La varilla de agitación__X_______

250 ml ___x______ Cilindro graduado

Tubo de ensayo ___X______ Pipeta ___x______ Placa de Petri ___x______

Incluya sus dibujos aquí:

Experimento 1: neutralización de ácidos y bases

En este experimento, aprenderá a neutralizar y eliminar adecuadamente las soluciones ácidas y básicas.

1. Utilice el marcador permanente para etiquetar tres de los botes de pesaje como A & # 8211 C.

2. Mida y vierta aproximadamente 5 ml de agua en el bote de pesaje & # 8220A & # 8221.

3. Agregue 0,5 g de bicarbonato de sodio para pesar el bote & # 8220B & # 8221.

4. Mida y vierta aproximadamente 5 ml de agua en el bote de pesaje & # 8220B & # 8221. Pipetee suavemente la solución hacia arriba y hacia abajo hasta que el bicarbonato de sodio se disuelva por completo en el agua.

5. Mida y vierta 5 ml de solución de ácido acético para pesar el bote & # 8220C & # 8221.

6. Utilice las tiras reactivas de tornasol para determinar si las sustancias en los botes de pesaje A & # 8211 C son ácidas o básicas. Esto se logra sumergiendo brevemente una tira sin usar del papel tornasol en cada uno de los botes de pesaje. Registre sus resultados de color en la Tabla 2.

7. Pipetee 1 mL de la solución de bicarbonato de sodio del bote de pesaje & # 8220B & # 8221 en el bote de pesaje & # 8220C & # 8221. Remolque suavemente el bote de pesaje & # 8220C & # 8221 para mezclar.

8. Desarrolle y registre una hipótesis con respecto al pH del bote de pesaje “C”. Registre esto en la sección Preguntas posteriores al laboratorio.

9. Pruebe el pH del bote de pesaje & # 8220C & # 8221 usando papel tornasol nuevo. Registre su resultado en la Tabla 3.

10. Repita el Paso 9 cuatro veces más hasta que se haya agregado todo el bicarbonato de sodio para pesar el bote “C”.

Tabla 2: Resultados iniciales de la prueba de tornasol
Pesar barco Contenido químico Resultados de tornasol Observaciones adicionales
A
B
C
Tabla 3: Neutralización de un ácido
Cantidad de base Resultado de tornasol
1 ml
2 ml
3 ml
4 ml
5 ml

1. Exprese su hipótesis (desarrollada en el Paso 8) aquí. Asegúrese de incluir cuál cree que será el pH y por qué.

2. ¿Qué es una reacción de neutralización?

3. ¿Cuándo se pueden utilizar las reacciones de neutralización en un entorno de laboratorio?

4. ¿En qué punto se neutralizó el ácido acético en el bote de pesaje “C”?

5. ¿Cuáles cree que habrían sido los resultados si se hubiera usado una solución más fuerte de bicarbonato de sodio? ¿Haría falta más o menos para neutralizar el ácido? ¿Qué pasa con una concentración más débil de bicarbonato de sodio?

1. Enumere los números atómicos de cada uno de los siguientes elementos.

Planchar _________ Oxígeno _________
Calcio _________ Nitrógeno _________
Potasio _________ Hidrógeno _________

2. ¿Qué determina si un enlace es polar?

3. Utilice la tabla periódica para determinar si el cloruro de potasio (KCl) se formó a través de enlaces covalentes o iónicos. Utilice evidencia de la Introducción para respaldar su respuesta.

4. Investigue dos moléculas polares comunes y dos moléculas apolares comunes. Dibuja su estructura molecular y explica cómo la estructura hace que cada molécula sea polar o no polar.

Experimento 1: Slime Time

Las tintas pueden ser polares o no polares. Los disolventes polares recogen tintas polares, mientras que los disolventes no polares recogen tintas no polares. En este experimento, usará tintas para identificar el limo y la masilla tonta como polar o no polar. También utilizará cromatografía en papel para verificar que las tintas estén correctamente identificadas como polares o no polares.

Parte 1: Hacer slime

1. Pese 0,5 g de goma guar en un vaso de precipitados de 250 ml.

2. Mida 50,0 mL de agua destilada en un cilindro graduado de 100 mL y viértalo en el vaso de precipitados de 250 mL que contiene la goma guar.

3. Revuelva rápidamente la mezcla con una varilla de madera durante tres minutos o hasta que se disuelva la goma guar.

4. Mida 4,00 ml de una solución de bórax al 4% en un cilindro graduado de 10 ml y agréguelo a la goma guar y al agua.

5. Revuelva la solución hasta que se convierta en una baba. Esto tomará unos pocos minutos. Si la baba permanece demasiado líquida, agregue 1.0 ml más de la solución de bórax al 4.0% y continúe revolviendo hasta que la baba esté un poco líquida o pegajosa.

6. Una vez que esté satisfecho con el slime, viértalo en sus manos. Asegúrese de no dejar caer nada al suelo.

7. Manipula la baba en tus manos. Escriba las observaciones realizadas sobre cómo se vierte, se estira, se rompe, etc. el limo en la Parte 1 de la sección Datos. PRECAUCIÓN: El limo es resbaladizo y si se cae puede hacer que el área de trabajo esté resbaladiza.

8. Vuelva a colocar la baba en el vaso de precipitados y LÁVESE LAS MANOS.

Parte 2: Pruebas de tinta con limo y masilla

1. En una hoja de papel de cuaderno, haga una marca de 20 & # 8211 25 mm de largo de cada una de las tintas que está probando (marcador permanente, resaltador, Borrado en seco y Uni-ball® Roller Pen). Separe las marcas al menos a una pulgada de distancia. Use un lápiz para etiquetar cada marca con su descripción.

una. Tintas solubles en agua Incluya los de resaltadores y ciertos bolígrafos.

B. Tintas insolubles en agua Incluya los que están en un bolígrafo / rotuladores permanentes, papel de periódico y rotuladores de borrado en seco.

2. Mientras se secan las tintas, seleccione un pasaje o una imagen en el periódico para probar con la baba.

3. Desarrolle una hipótesis que indique si cree o no que el limo producido en la Parte 1 absorberá la tinta del papel de periódico. Registre esta hipótesis en la sección Preguntas posteriores al laboratorio. Luego, rompa un pequeño trozo de baba de 3 & # 8211 5 cm de diámetro. Coloque suavemente esta pieza sobre la impresión del periódico, luego recójala con cuidado nuevamente.

4. Observe y registre en la Tabla 1 si la tinta se incorporó al fango o no.

5. Rompa otro pequeño trozo de baba. Una vez que las tintas del Paso 1 se hayan secado, coloque suavemente la baba en la parte superior del primer lugar en el papel del cuaderno, luego recójala con cuidado. Repita esto para cada una de las tintas. Observe y registre qué tintas fueron recogidas (disueltas) por el limo en la Tabla 1.

6. Repita esta prueba de tinta dos veces más para mayor precisión.

7. Haga una hipótesis sobre qué tintas captará la masilla tonta en la Parte 2 de la sección de Datos. Luego, realice las pruebas de tinta con Silly Putty® de acuerdo con el procedimiento descrito en los Pasos 5 y # 8211 6.

Parte 3: Cromatografía de muestras de tinta

1. Utilice un lápiz o unas tijeras para pinchar un pequeña agujero en el centro de un trozo de papel de filtro (ver Figura 7).

2. Coloque el papel de filtro a una distancia uniforme de aproximadamente 2 cm del orificio pequeño con las dos tintas insolubles y las dos tintas solubles que se utilizaron en la Parte 2, Paso 1.

3. Obtenga ½ pieza de papel de filtro. Dobla el papel por la mitad varias veces para que forme una mecha estrecha.

4. Inserte la mecha en el orificio del papel manchado de modo que quede por encima de la parte superior del papel de filtro aproximadamente 2 cm.

5. Llene un vaso de precipitados de 250 ml ¾ de agua.

6. Coloque el papel de filtro en la parte superior del vaso de manera que la parte inferior de la mecha esté en el agua. El papel debe colgar sobre el borde del vaso de precipitados con el lado manchado hacia arriba.

7. Deje que el agua viaje hasta que esté aproximadamente a 1 cm del borde del papel de filtro. Retire el papel de filtro del vaso de precipitados.

8. Observe qué tintas se movieron desde donde se vieron originalmente. Registre sus observaciones en la Parte 3 de la sección de Datos.

Tabla 1: Resultados de las pruebas de tinta para Silly Putty®
Nombre de la tinta Recogido (disuelto) No recogí
Prueba 1 Prueba 2 Prueba 3 Prueba 1 Prueba 2 Prueba 3
Papel prensa
Resaltador
Bolígrafo Uni-ball®
Marcador permanente
Marcador de borrado en seco

· Hipótesis para Silly Putty® (Procedimiento Parte 2, Paso 7):

· Observaciones de tintas tras cromatografía:

1. Registre su hipótesis sobre la capacidad del limo para recoger tinta de papel de periódico aquí.

2. ¿El limo recogió tintas solubles en agua o insolubles en agua? A partir de estos resultados, ¿qué puede concluir acerca de la polaridad de las moléculas de limo?

3. Explica cómo determinaste tu hipótesis sobre si la masilla tonta recogería tintas solubles en agua. ¿Fue correcta tu hipótesis?

4. ¿Las tintas que utilizó se clasificaron correctamente como solubles e insolubles? Explica tu respuesta.

1. La fijación de nitrógeno es un proceso natural mediante el cual las formas inertes o no reactivas de nitrógeno se transforman en nitrógeno utilizable. ¿Por qué este proceso es importante para la vida?

2. Teniendo en cuenta lo que ha aprendido acerca de los enlaces de hidrógeno compartidos entre los ácidos nucleicos en el ADN, ¿qué par es más estable bajo calor creciente: adenina y timina, o citosina y guanina? Explicar por qué.

3. ¿Cuál de las siguientes no es una molécula orgánica de metano (CH4), fructosa (C6H12O6), rosano (C20H36) o amoníaco (NH3)? ¿Cómo lo sabes?

Experimento 1: Prueba de proteínas

Las moléculas de proteínas de muchos alimentos proporcionan los componentes básicos de los aminoácidos que necesitan nuestras propias células para producir nuevas proteínas. Para determinar si una muestra contiene proteína, se utiliza un reactivo llamado solución de Biuret. La solución de biuret contiene iones de cobre. Sin embargo, el estado químico de los iones de cobre en la solución de Biuret hace que formen un complejo químico con los enlaces peptídicos entre los aminoácidos (cuando están presentes), cambiando el color de la solución. La solución de biuret es normalmente azul, pero cambia a rosa cuando están presentes péptidos cortos y a violeta cuando están presentes polipéptidos largos.

1. Etiquete cinco tubos de ensayo 1, 2, 3, 4 y 5.

2. Prepare sus muestras de prueba de la siguiente manera:

una. Mezcle una clara de huevo con 25 ml de agua en un vaso de precipitados de 250 ml para crear una solución de albúmina. Pipetee 5 ml de esta solución en el tubo de ensayo 1.

B. Mezcle el paquete de gelatina Knox® con 50 ml de agua caliente en un segundo vaso de precipitados de 250 ml. Revuelva hasta que se disuelva. Pipetee 5 ml de esta solución en el tubo de ensayo 2.

3. Pipetee 5 ml de la solución de glucosa al 1% en el tubo de ensayo 3.

4. Utilice la probeta graduada de 10 ml para medir y vierta 5 ml de agua en el tubo de ensayo 4.

5. Pipetee 5 ml de la "Solución desconocida" en el tubo de ensayo 5.

6. Registre el color inicial de cada muestra en la Tabla 1.

7. Desarrolle una hipótesis con respecto a lo que predice que sucederá cuando se agregue la solución de Biuret a los Tubos 1 & # 8211 4. Registre su hipótesis en la sección Preguntas posteriores al laboratorio. Luego, pipetee cinco gotas de solución de Biuret en cada tubo de ensayo (1 y # 8211 5). Gire cada tubo para mezclar.

8. Registre el color final en la Tabla 1. Nota: La proteína está presente en la muestra si se observa un color violeta claro.

Tabla 1: Prueba de los resultados de las proteínas
Muestra Color inicial Color final Presente de proteína
Solución de albúmina 1 & # 8211
Solución de gelatina 2 & # 8211
3 & # 8211 Glucosa
4 & # 8211 Agua
5 & ​​# 8211 Desconocido

1. Registre su hipótesis sobre lo que sucederá cuando la solución de Biuret se mezcle con las soluciones de los tubos de ensayo 1, 2, 3 y 4 aquí. Asegúrese de utilizar el razonamiento científico para respaldar su hipótesis.

2. Escriba una declaración para explicar la composición molecular de la solución desconocida basada en los resultados obtenidos durante la prueba con cada reactivo.

3. La dieta y la nutrición están íntimamente ligadas al estudio de las biomoléculas. ¿Cómo debe controlar su ingesta de alimentos para asegurarse de que las células de su cuerpo tengan los materiales necesarios para funcionar?

4. La molécula que se muestra a continuación produjo un color azul cuando se probó con el reactivo de Benedict, un color amarillo cuando se probó con IKI y un color violeta cuando se probó con el reactivo de Biuret. Según la estructura que se muestra a continuación y estos resultados químicos, ¿qué tipo de biomolécula es esta?

1. Un gradiente de concentración afecta la dirección en la que se difunden los solutos. Describe cómo se mueven las moléculas con respecto a la concentración.

2. ¿Cómo afecta el tamaño de un soluto a la velocidad de difusión? Considere el tamaño y la forma de una molécula en su respuesta.

3. ¿La polaridad afecta la difusión? Explica tu respuesta usando principios científicos.

Experimento 1: difusión a través de un líquido

En este experimento, observará el efecto que tienen los diferentes pesos moleculares sobre la capacidad del tinte para viajar a través de un medio viscoso.

1. Use cinta adhesiva transparente para asegurar la mitad (ya sea la mitad inferior o la mitad superior) de la placa de Petri sobre una regla. Asegúrese de que puede leer las marcas de medición en la regla a través de la placa de Petri. El plato debe colocarse con el extremo abierto del plato hacia arriba.

2. Llene con cuidado la mitad de la placa de Petri con jarabe de maíz hasta cubrir toda la superficie.

3. Desarrolle una hipótesis discutiendo qué tinte cree que se difundirá más rápidamente a través del jarabe de maíz y por qué. Registre esto en la sección Preguntas posteriores al laboratorio. Luego, coloque una sola gota de tinte azul en el medio del jarabe de maíz. Observe la posición donde cayó el tinte leyendo la ubicación del borde exterior del tinte en la regla.

4. Registre la ubicación del borde exterior del tinte (la distancia que ha viajado) cada diez segundos durante un total de dos minutos. Registre sus datos en las Tablas 1 y 2.

5. Repita los pasos 1 y # 8211 4 usando el tinte rojo, la segunda mitad de la placa de Petri y jarabe de maíz fresco.

Tabla 1: Tasa de difusión en jarabe de maíz
Tiempo (seg) Tinte azul Tinte rojo Tiempo (seg) Tinte azul Tinte rojo
10 70
20 80
30 90
40 100
50 110
60 120
Tabla 2: Velocidad de difusión de colorantes de diferentes pesos moleculares
Estructura Peso molecular Distancia total recorrida (mm) Velocidad de difusión (mm / h) *
Tinte azul
Tinte rojo

* Multiplique la distancia total difundida por 30 para obtener la tasa de difusión por hora

1. Registre su hipótesis del Paso 3 aquí. Asegúrese de validar sus predicciones con razonamiento científico.

2. ¿Qué tinte se difundió más rápido?

3. ¿Se corresponde la velocidad de difusión con el peso molecular del tinte?

4. ¿La tasa de difusión cambia con el tiempo? ¿Por qué o por qué no?

5. Examine el siguiente gráfico. ¿Coincide con los datos que registró en la Tabla 2? Explica por qué o por qué no. Envíe su propia parcela si es necesario.

Experimento 2: gradientes de concentración y permeabilidad de la membrana

En este experimento, dializará una solución de glucosa y almidón para observar:

· El movimiento direccional de la glucosa y el almidón.

· El efecto de una membrana selectivamente permeable sobre la difusión de estas moléculas.

Un indicador es una sustancia que cambia de color cuando está en presencia de la sustancia que indica. En este experimento, se utilizará IKI como indicador para probar la presencia de almidón y glucosa.

· El tubo de diálisis se puede enjuagar y volver a utilizar si comete un error.

1. Mida y vierta 50 mL de agua en un vaso de precipitados de 100 mL. Corte un trozo de tubo de diálisis de 15,0 cm de largo. Sumerja el tubo de diálisis en el agua durante al menos 10 minutos.


Pasar del cuestionamiento al entendimiento

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Para obtener el área de superficie de la caja rectangular de 5 cm de largo, 3 cm de ancho y 4 cm de alto, usaremos la fórmula del Área de Superficie de la caja rectangular. La fórmula del área de superficie que se utilizará se expresa a continuación:

Solución:

Paso 1: Antes de resolver, enumeremos lo dado.

Paso 2: Usemos lo dado para sustituir en la fórmula:

SA = 2 ((3 cm x 5 cm) + (4 cm x 5 cm) + (4 cm x 3 cm))

SA = 2 (15 cm² + 20 cm² + 12 cm²)

Respuesta:

La superficie de una caja rectangular de 5 cm de largo, 3 cm de ancho y 4 cm de ancho es 94 cm².


4.5: Preguntas posteriores al laboratorio - Biología

La ciencia es un área de estudio que involucra todo y cualquier cosa en todo el Universo. Nos ayuda a comprender quiénes somos como seres humanos y qué necesitamos para sobrevivir. Aprende sobre los diferentes compuestos, átomos y moléculas que componen los diferentes alimentos y bebidas que consumimos. Es un área de estudio necesaria para que los estudiantes aprendan, comprendan y exploren.

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Pagina del titulo

Debe incluir el título (breve, conciso, pero descriptivo), su nombre, el nombre del instructor del laboratorio y la sección del laboratorio (como L14 o L24, etc.).

Nota: esta es una hoja separada

Cuerpo del informe

Identifique las diferentes secciones del cuerpo del informe con títulos.

  • Introducción
    • El informe debe comenzar con un párrafo breve (oraciones completas) que incluya un enunciado del problema y su hipótesis (recuerde que su hipótesis debe escribirse como un enunciado comprobable).
    • ¿Qué pregunta estás tratando de responder?
    • Incluya cualquier observación preliminar o información de antecedentes sobre el tema (en este caso, la tableta Alka-Seltzer), como para qué se usa la tableta, instrucciones en el empaque, experiencia personal que pueda tener, etc. Asegúrese de citar cualquier fuente.
    • Escriba una posible explicación / predicción del problema / pregunta que está haciendo.
    • Asegúrese de que esta posible explicación / predicción sea una oración completa y no una pregunta.
    • Asegúrese de que la declaración sea comprobable. En otras palabras, ¿puede realizar un experimento que respalde o refute su predicción? Si no puede pensar en una forma de probar su predicción, entonces no es comprobable.
    • Haga una lista (no es necesario que esté en forma de párrafo) de todos elementos utilizados en el experimento y sus cantidades. De los materiales utilizados, identificar cuáles son variables dependientes e independientes, constantes (variable estandarizada) y grupo de control (perderá puntos si no identifica todos variables dependientes e independientes, constantes y controles).
    • Escribe al menos un párrafo (oraciones completas) que explique lo que hiciste en el experimento.
    • Su procedimiento debe estar escrito para que cualquier otra persona pueda repetir el experimento. Por ejemplo, si usó agua caliente, cómo calentó el agua y qué temperatura tenía si eligió agua salada, cuál fue la concentración del agua salada, etc. Eso significa que incluso algunos de los pasos más obvios deben indicarse para que no haya incertidumbre.
    • Al diseñar el procedimiento, asegúrese de incluir la repetición del experimento (ensayos) para garantizar que los datos sean reproducibles y válidos.
    • Escribe al menos un párrafo (oraciones completas) que describa los resultados y las observaciones de tu experimento. Aquí comparará los resultados de los grupos de control y los grupos experimentales y no simplemente enumerará los números.
    • Esta sección también incluye ambos una tabla de datos y un gráfico para ilustrar los resultados de su experimento. Asegúrese de incluir promedios calculados de ensayos.
    • Todas las tablas, gráficos y tablas deben etiquetarse adecuadamente (un título, etiquetas para X &erio y eje, leyenda, etc.) para que el lector pueda comprender la información presentada.
    • Escribe al menos un párrafo reafirmando tu hipótesis y si aceptas o rechazas tu hipótesis.
    • En esta sección, explicar por qué aceptó o rechazó su hipótesis usando datos del experimento. Incluya un breve resumen de los datos (promedios, más alto, más bajo, etc.) para ayudar al lector a comprender sus resultados y por qué ha llegado a conclusiones particulares.
    • Discuta sus pensamientos sobre las posibles razones de sus resultados (por ejemplo, si eligió el agua salada como variable, dé una posible razón por la cual el agua salada, en particular, puede haber generado sus resultados).
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    realmente me ayudó mucho. muchas gracias ... muy útil para los estudiantes de IGCSE.

    gracias por compartir, realmente me ayudó mucho.

    Qué tengo que hacer. No estudié nada y tengo un examen después de 2 semanas, por favor dígame cómo puedo obtener esto, ¿qué debo hacer? ¿Cómo puedo estudiar esto? Después de 4 años estoy de vuelta a estudiar ayúdame por favor.

    Escribiré este examen el año que viene, así que me ayudará a revisar para mi examen.
    por favor envíeme un correo electrónico con su experiencia a [email protected] adiós. amigos

    ¡¡increíble!! Muchas gracias por estas notas.

    Saludos Emma,
    En verdad, felicidades por este maravilloso trabajo. Y sobre todo muchas gracias por compartirlo con nosotros.
    No soy un estudiante de biología (nunca me fue bien en Biología, puede ser porque no tenía sus notas. Jajaja.) Quiero pedirle permiso para usar sus notas (solo un pdf) para crear un informe interactivo. e-book que les aseguro no se utilizará con fines comerciales ni lucrativos, etc. Estoy realizando un estudio sobre la disminución de estudiantes de Biología y la forma de aprender en mi país y me gustaría saber si se proporcionan con las herramientas adecuadas y buenas notas si esto tendrá algún tipo de impacto positivo, etc. en sus estudios.
    Le agradezco de antemano su amable comprensión.
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