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10.3: Preguntas previas al laboratorio - Biología

10.3: Preguntas previas al laboratorio - Biología


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  1. ¿Qué se entiende por "dilución en serie"?
  2. ¿Por qué sería importante conocer la cantidad de bacterias en una muestra de comida o bebida?
  3. Escribe lo siguiente en notación científica:
    1. 1:10
    2. 1:10,000
    3. 234 x 104
  4. ¿Cuál es el inverso de 3,0 x 10-5?
  5. ¿Qué métodos podrían sobrestimar la cantidad de células en una muestra?
    1. El recuento directo
    2. El recuento de placa estándar: método de aislamiento de placa extendida

El recuento directo

Los microbios en una muestra se pueden contar viéndolos y contándolos a través de un microscopio y utilizando un portaobjetos especial llamado cámara de conteo Petroff-Hausser. Las células sanguíneas se pueden contar de esta manera mediante un hemocitómetro (consulte la sección de recursos). Se coloca un volumen de muestra conocido en el portaobjetos y el portaobjetos tiene líneas de cuadrícula que marcan áreas de volumen conocido. Las áreas marcadas se pueden evaluar en un patrón particular. Las células se cuentan en cada área y, por lo tanto, se puede calcular un recuento total para la muestra.

En el pasado, trabajaba para una empresa de jugos en QC. Una de las pruebas en OJ fue contar los contaminantes de hongos e insectos a través de un portaobjetos de Petroff-Hausser.

Prof. Kelly Burke

Los contadores de células electrónicos también cuentan las células individuales, normalmente a medida que pasan por un láser (citometría de flujo). Ambos métodos cuentan tanto las células vivas como las muertas y potencialmente cualquier residuo en la solución. No realizará un conteo directo en este laboratorio.

El recuento de placas estándar

Método de aislamiento de placa extendida

En el RCP se desea determinar la densidad (número) de bacterias en una muestra de caldo / espécimen de bacterias de densidad desconocida (número de células / unidad de volumen). Se podría tomar una pequeña muestra de la muestra, tal vez 1,0 ml o 0,1 ml y esparcirla en una placa de Petri para contar las colonias resultantes (recuerde que cada colonia es de una célula o unidad bacteriana). Sin embargo, la mayoría de las muestras, según la turbidez, pueden tener millones de bacterias por ml en la muestra. Si se dispusiera en placas de 1,0 ml sobre agar, el número de bacterias sería tal que sería imposible contar o incluso discernir colonias individuales. Por tanto, se deben realizar una serie de diluciones con la muestra para obtener una muestra que produzca una placa en la que se puedan contar las colonias.

Para hacer esto, se toma un volumen conocido de la muestra original y se coloca en un tubo de dilución de un volumen conocido, generalmente de agua o caldo estéril. Después de mezclar, se toma un volumen conocido del tubo de dilución y se coloca en otro tubo de dilución. Esta serie de diluciones se puede repetir varias veces, lo que da como resultado un número cada vez menor de células en cada tubo a lo largo de la línea.

De las mezclas diluidas, se puede extraer 1,0 ml o 0,1 ml y esparcirlo sobre una placa de medio. En algún lugar de la serie habrá un "plato contable". Una placa contable es aquella que tiene entre 30-300 UFC / ml (Colony Forming Uliendres / ml). Menos de 30 colonias (TFTC) y los recuentos erróneos en un plato se vuelven estadísticamente problemáticos. ¡Más de 300 colonias (TNTC) y el conteo se vuelve muy difícil y se cometen errores fácilmente! Verá esto cuando coloque sus muestras.

Una vez que se ha contado el número de UFC en un plato, ese número debe multiplicarse por la cantidad que se diluyó la muestra: el factor de dilución. Por ejemplo, si diluye su muestra por 100 veces (lo que significa que la muestra que utilizó estaba 100 veces más diluida que la muestra original), debe multiplicar su recuento por 100 para determinar la densidad de bacterias en la muestra original. Hay varias formas de calcular las diluciones en la serie y las diluciones finales en placa. Se puede realizar cualquier tipo de dilución; sin embargo, en un SPC las diluciones son típicamente 1:10 o 1: 100, que se vuelven bastante fáciles de calcular una vez que las practicas y obtienes los patrones. El proceso se ilustra en los ejemplos siguientes.

Ejemplo ( PageIndex {1} )

Una sola dilución se puede calcular de la siguiente manera:

Cantidad transferida + volumen del tubo de dilución = DF (factor de dilución)

Si se transfiere 1,0 ml a un tubo de dilución de 9,0 ml, la dilución es:

¿Cuál sería la dilución si se añadieran 0,1 ml a 9,9 ml? Muestre cómo determinaría esto.

Solución

Una serie de diluciones es acumulativa. Cada tubo está más diluido que el anterior, por lo que las diluciones se componen (se multiplican juntas) a medida que avanza la serie:

Estas diluciones también se pueden calcular con esta ecuación de uso común:

[V_1D_1 = V_2D_2 nonumber ]

donde V = volumen; D = dilución

Supongamos que transfirió 10.0 ml de su muestra original sin diluir a un tubo de dilución de 90.0 ml. (V_1 ) es el volumen que transferirá (10,0 ml). (D_1 ) es siempre 1 porque ese es el tubo de dilución inicial. (V_2 ) es el volumen total en el siguiente tubo de dilución una vez que le haya transferido la muestra. Entonces, en este caso,

[ begin {align *}
10.0 mathit {ml} (1) & = 100.0 mathit {ml} (D_2); text {resolviendo para} D_2
10.0 mathit {ml} /100.0mathit {ml} & = D_2
1/10 & = D_2 text {o}
10 ^ {- 1} & = D_2
end {alinear *} nonumber ]

Aquí hay un ejemplo más inusual. Transfiera 3.0ml a un tubo de dilución con 10.0ml (¿Por qué? ¡Porque uno puede! No es el que normalmente lo haría ...)

[ begin {align *}
3,0 mathit {ml} (1) & = 10,0 mathit {ml} (D_2); text {resolviendo para} D_2
3.0 mathit {ml} /13.0mathit {ml} & = D_2
0.23 & = D_2 text {o}
2,3 times 10 ^ {- 1} & = D_2
end {alinear *} nonumber ]

El siguiente paso es colocar la muestra en un plato. Una vez más, normalmente colocaría 1,0 ml o 0,1 ml en una placa según lo que pueda necesitar para sus diluciones finales. Muestre el factor de dilución (DF) para cada placa (el valor de dilución final para la placa):

Para determinar el número (densidad celular original) de bacterias en la muestra original:

Número de UFC:

OCD = Cantidad plateada x factor de dilución

Si diluyó una placa 100x (1: 100 o (10 ​​^ {- 2} )), transfirió 1,0 ml a una placa de agar, lo que dio como resultado 65 colonias en la placa:

65 es el número de UFC

1.0 ml es la cantidad plateada

(10 ​​^ {- 2} ) es el factor de dilución

Entonces,

65 UFC

(1.0 mathit {ml} lx 10 ^ {- 2} = 65 x 10 ^ 2 text {CFU} / mathit {ml} = 6.5 x 10 ^ 3 text {CFU} / mathit {ml} = ) la densidad de bacterias en su muestra original.


Ejemplo de laboratorio de ósmosis 2

Introducción:
La energía cinética, una fuente de energía almacenada en las células, hace que las moléculas choquen entre sí y se muevan en nuevas direcciones. La difusión es el resultado de este contacto. La difusión es el movimiento aleatorio de moléculas a un área de menor concentración desde un área de mayor concentración. La ósmosis es un tipo de difusión. Esta es la difusión de agua a través de una membrana selectivamente permeable desde una región de mayor potencial hídrico a una región de menor potencial hídrico. El potencial hídrico es la medida de la energía libre del agua en una solución. Un sistema vivo también contiene un transporte activo para crear movimiento de partículas como iones que se mueven en contra de su gradiente de concentración. La fuente de energía ATP se utiliza durante este proceso para mover las partículas a través de la membrana celular. Este experimento tiene lugar para medir la difusión de pequeñas moléculas a través de un tubo de diálisis. Este tubo actúa como una membrana selectivamente permeable, permitiendo el paso de moléculas más grandes, pero lentamente. La diálisis es el movimiento de un soluto a través de una membrana selectivamente permeable.

Cuando las dos soluciones en ambos lados de la membrana son iguales y no se detecta movimiento neto, las soluciones son isotónicas. Esto significa que las soluciones tienen la misma concentración de solutos. Si dos soluciones difieren en la concentración de solutos que tiene cada una, la que tiene más soluto es hipertónica. La solución que tiene menos soluto es hipotónica.

El potencial hídrico predice el movimiento del agua hacia adentro o hacia afuera de las células vegetales. Se abrevia con la letra griega psi y tiene dos componentes: el componente de presión física, el potencial de presión y los efectos de los solutos, el potencial de soluto. El agua siempre se mueve de un área de alto a bajo potencial hídrico. La ecuación es que el potencial hídrico es igual a la suma del potencial de presión y el potencial de soluto.

En una célula vegetal, es necesaria la presión de turgencia. Esta es una presión disponible para las plantas en un entorno hipotónico. La presión de turgencia le da a las plantas su estructura y fuerza. Cuando una célula vegetal está en una solución isotónica, la presión de turgencia disminuye, provocando el marchitamiento de la estructura de la planta. En las soluciones hipertónicas, la membrana plasmática de las plantas se contrae y se aleja de la pared celular, una acción denominada plasmólisis.

Hipótesis:
La difusión y la ósmosis ocurren entre diferentes soluciones molares hasta que las soluciones son isotónicas, lo que afecta la presión de turgencia de las células vegetales.

Materiales:
Laboratorio 1A: los materiales utilizados para realizar este experimento son los siguientes: una tira de tubo de diálisis de 30 cm (previamente remojada), agua destilada, solución de glucosa al 15% / almidón al 1%, vaso de precipitados de 250 ml, solución de yoduro de yodo y potasio, testape de glucosa y cuerda.

Laboratorio 1B - Los materiales utilizados para realizar este experimento son los siguientes: seis tiras de tubo de diálisis empapadas previamente, agua destilada, soluciones de sacarosa de 0,2 M, 0,4 M, 0,6 M, 0,8 M y 1,0 M, seis vasos de precipitados de vidrio de 250 ml, una cuerda y un balance electrónico.

Laboratorio 1C - Los materiales utilizados para llevar a cabo este experimento son los siguientes: seis vasos de precipitados de vidrio de 250 ml, una papa, un barrenador, un cuchillo, agua destilada, soluciones de sacarosa 0,2 M, 0,4 M, 0,6 M, 0,8 M y 1,0 M, cuerda, una regla y una balanza electrónica.

Laboratorio 1D - Los materiales utilizados para la realización de este experimento son los siguientes: papel cuadriculado, lápiz, regla, calculadora y lápices de colores.

Laboratorio 1E - Los materiales utilizados para la realización de este experimento son los siguientes: microscopio óptico, portaobjetos de microscopio, cubreobjetos, agua destilada, solución de NaCl, papel, lápiz y piel de cebolla.

Procedimiento:
Laboratorio 1A: obtenga un trozo de tubo de diálisis de 30 cm que haya sido remojado previamente en agua destilada. Ate un extremo de forma segura. Abra el otro extremo del tubo de diálisis e inserte 15 ml de solución de glucosa al 15% / almidón al 1%. Ate el otro extremo de la bolsa, dejando espacio para la expansión. Registre el color de la solución dentro de la bolsa. Pruebe la solución de glucosa al 15% / almidón al 1% para detectar la presencia de glucosa usando Testape. Llene un vaso de precipitados de 250 ml con agua destilada y agregue aproximadamente 4 ml de solución de Lugol (IKI) al agua destilada. Pruebe esta solución para detectar la presencia de glucosa también con el Testape. Registre los resultados en la tabla de datos. Sumerja la bolsa en el vaso de precipitados con solución. Deje reposar durante aproximadamente 30 minutos, o hasta que se observe una coloración distinta. Registre los colores finales de las soluciones en la bolsa y en el vaso de precipitados. Pruebe ambas soluciones una vez más para detectar la presencia de glucosa con las tiras de Testape.

Laboratorio 1B: Antes de comenzar este laboratorio, lávese las manos. Obtenga seis tiras de diálisis de 30 cm que se hayan remojado previamente en agua destilada. Ate cada extremo de forma segura. Vierta aproximadamente 25 ml de cada solución molar de sacarosa en sus respectivas bolsas (que deben estar etiquetadas, pero no en el tubo). Ate los otros extremos de forma segura con una cuerda, con cuidado de sacar las burbujas de aire y dejar espacio para la expansión. Enjuague cada bolsa y seque el agua. Pese y registre la masa inicial de las bolsas de diálisis en la tabla de datos. Llene seis vasos de precipitados de vidrio de 250 ml con 2/3 de su capacidad de agua destilada y etiquete cada vaso con la molaridad de sacarosa de su respectiva bolsa. Sumerja cada bolsa en el agua destilada. Deje reposar durante treinta minutos. Retire cada bolsa, seque los lados para eliminar la solución adicional y pese y registre la masa en gramos de cada bolsa y determine la diferencia de masa y el cambio porcentual en la masa. Luego, compare los porcentajes del grupo con la clase.

Laboratorio 1C: Vierta 100 ml de las soluciones de sacarosa asignadas en sus vasos de precipitados de 250 ml (preetiquetados). Consigue una papa grande. Con un barrenador, saque 24 muestras de la papa y mida cada una en centímetros para que todas tengan la misma longitud (use el cuchillo para cortar los extremos). Asegúrese de no dejar piel con las muestras. Coloque estos núcleos en un vaso de precipitados tapado hasta que se pueda obtener una balanza electrónica. Determine la masa de cuatro núcleos a la vez, colocando los cuatro en sus soluciones de sacarosa. Registre estos datos para cada uno de los seis vasos de precipitados. Deje que estas muestras de papa se asienten sumergidas en las soluciones durante la noche, cubiertas. Retire los núcleos, elimine el exceso de solución y pese las muestras, registrando la masa en la tabla de datos. Determine la diferencia de masa, el cambio porcentual en masa y el cambio porcentual promedio de la clase en masa. Grafique el aumento y la disminución de masa de los núcleos de papa de acuerdo con la molaridad de las soluciones en las que se colocaron en el gráfico 1.2.

Laboratorio 1D: Con papel, lápiz y calculadora, determine el potencial de soluto de la solución de sacarosa, el potencial de presión y el potencial de agua. Además, obtenga papel cuadriculado y grafique los valores dados para el cambio porcentual de calabacín en la masa y la molaridad de las soluciones de sacarosa en el gráfico 1.3.

Laboratorio 1E: Prepare un portaobjetos de piel de cebolla en húmedo. Observa con un microscopio óptico y dibuja lo que ves. Agregue unas gotas de la solución de NaCl, observe y dibuje lo que ve allí también.

Datos:
Tabla 1.1 La presencia de glucosa en las soluciones de vasos y bolsas


10.3: Preguntas previas al laboratorio - Biología

Muchos estudiantes que recién comienzan su educación científica pueden no estar familiarizados con el concepto de resumen en un informe de laboratorio; a menudo no se requiere en los cursos de introducción a las ciencias debido a su nivel de dificultad. A medida que uno toma clases de nivel superior, el maestro especificará si desea que se incluya un resumen en los informes escritos. Si es necesario, es la primera parte de su informe, que sigue directamente a la página del título y continúa con la introducción.

El resumen, aunque es lo primero logísticamente, siempre debe escribirse al final. Debe escribirse al final porque es la esencia de su informe, extrayendo información de todas las demás secciones del informe. Explica por qué se realizó el experimento y qué conclusiones se extrajeron de los resultados obtenidos. Una pauta general para un resumen tiene cinco secciones o áreas de enfoque: por qué se realizó el experimento, el problema que se aborda, qué métodos se utilizaron para resolver el problema, los principales resultados obtenidos y las conclusiones generales del experimento en su conjunto. Sin embargo, no se deje engañar por esta lista y piense que el resumen es una sección larga. De hecho, debería ser significativamente más corto que todos los demás. Toda esta información debe resumirse de manera clara pero concisa si el resumen va a tener éxito. La extensión promedio estimada de toda esta información es de un solo párrafo. Si bien esto puede parecer una extensión corta para contener toda la información requerida, es necesario porque lo obliga a ser preciso y compacto, dos cualidades esenciales.

La mejor manera de intentar escribir un resumen es dividirlo en las secciones mencionadas anteriormente. Las dos primeras secciones son muy similares y se pueden agrupar, pero no es necesario. Si decide abordarlos por separado, asegúrese de no repetir nada. A menudo, una sección se puede mencionar en una sola oración. Recuerde, la brevedad es la clave para un resumen exitoso. Cada sección se aborda a continuación para ayudar a aclarar qué se debe incluir y qué se puede omitir.

Lo más importante que debe recordar al escribir el resumen es ser breve y expresar solo lo pertinente. No se debe incluir información extraña. Un resumen exitoso es compacto, preciso y autónomo. También debe ser lo suficientemente claro para que alguien que no esté familiarizado con su experimento pueda entender por qué hizo lo que hizo y qué indicó el experimento al final. Una nota adicional es que los resúmenes generalmente se escriben en voz pasiva, pero es aceptable usar pronombres personales como yo o nosotros.

Preguntas generales que se abordarán en la sección de resúmenes

1. ¿Por qué se hizo y cuál es el problema que se está abordando?
Estas dos secciones se pueden agrupar en una breve declaración que resuma por qué se realizó el experimento en primer lugar. ¿Cuál era la pregunta que intentaba ser respondida? La ciencia es una exploración de la verdad. Se trata de curiosidad y de responder preguntas para descubrir por qué y cómo funcionan las cosas. El método científico es un claro ejemplo de esto primero plantear un problema o pregunta y luego intentar determinar la respuesta. Esta sección es el enunciado del problema original. Es la razón por la que se está realizando un experimento. Esto no debe incluir muchos detalles, más bien debe ser una declaración simple. Incluso puede expresarse en una o dos frases como máximo.

2. ¿Qué hiciste?
Esta parte del resumen establece lo que se hizo para intentar responder a la pregunta propuesta. De ninguna manera debería ser muy detallado. Contiene un breve resumen de lo que se hizo, destacando solo los pasos cruciales. Es la sección de materiales y métodos de su resumen, pero solo tiene una o dos oraciones. Es una descripción de cómo decidió abordar el problema.

3. ¿Qué averiguaste?
En otras palabras, ¿qué le dijo todo su arduo trabajo y preparación sobre la pregunta que se propuso responder? Esto contiene solo los resultados cruciales obtenidos. Los resultados cruciales son los necesarios para responder a su pregunta original planteada. Sin estos resultados, el experimento habría sido inútil. Los resultados deben indicarse brevemente y no deben explicarse, solo deben mencionarse. Es muy similar a la sección de resultados de su artículo, pero resalta solo los resultados pertinentes utilizados para sacar conclusiones. La extensión promedio de esta sección es de dos o tres oraciones como máximo. Sin embargo, este número puede variar, dependiendo de la complejidad del experimento, por lo que estas guías de longitud son solo eso, guías, no reglas.

¿4. Conclusiones?
Este es el final de su resumen, que depende directamente de los resultados obtenidos. Esta es la parte & quot y qué & quot de su experimento. "Entonces, qué" se refiere a lo que significan los resultados a largo plazo. No es necesario que incluya cómo sacó sus conclusiones, solo la conclusión final. Esto debe seguir directamente los resultados para que el lector sepa qué resultados llevaron a qué conclusiones. Este es el equivalente a la parte de discusión del artículo, pero nuevamente, como el resto del resumen, debe expresarse de manera breve y sucinta. No es necesario que explique cómo dedujo la conclusión de los resultados obtenidos, solo las conclusiones finales. Después de haber dicho esto, el resumen está completo.

Aquí hay dos ejemplos del mismo resumen, el ejemplo uno es un ejemplo de un resumen mal escrito, mientras que el ejemplo dos es un ejemplo de un resumen bien escrito. Las palabras en cursiva son enlaces a explicaciones que describen por qué las oraciones son un buen o mal ejemplo de un resumen.

Muestra 1: Este experimento determinará qué hará que las enzimas sean efectivas y qué las hará ineficaces. Probamos diferentes muestras de enzimas en un espectrofotómetro y registramos sus tasas de absorción. Se colocaron seis muestras en el espectrofotómetro, pero dos no contenían enzima, estas actuaron como blancos para las otras muestras. Las cuatro muestras restantes contenían Catecolasa en un rango de 0,5 ml a 1,75 m. La segunda mitad del experimento contenía cuatro tubos de ensayo con una cantidad constante de catecolasa, pero los niveles de pH variaban de cuatro a ocho. Se encontró que si la enzima estaba presente en grandes cantidades, entonces la tasa de absorción era alta, y si el nivel de pH variaba de 6 a ocho, entonces la tasa de absorción era alta. Por tanto, se puede decir que las enzimas funcionan bien en niveles de pH neutros y en grandes cantidades.

Muestra 2: Este experimento se realizó para determinar los factores que influyen positivamente en las velocidades de reacción de las enzimas en las actividades celulares, ya que algunas enzimas parecen ser más efectivas que otras. La actividad de la enzima catecolasa se midió a través de su tasa de absorción en un espectrofotómetro, utilizando luz con una longitud de onda de 540 nm. Comparamos las tasas de absorbancia en muestras con concentraciones variables de enzima y un pH constante de 7, y con muestras con concentración constante de enzima y niveles de pH variables. Las muestras con la concentración de enzima más alta tuvieron la mayor tasa de absorción del 95 por ciento en comparación con la muestra con la concentración más baja y una tasa de absorción del 24 por ciento. Esto sugiere que una mayor concentración de enzimas conduce a una mayor tasa de producción de producto. Las muestras con un pH entre seis y ocho tuvieron la mayor tasa de absorción del 70 por ciento en comparación con una tasa de absorción del 15 por ciento con un pH de 4, lo que sugiere que la catecolasa es más efectiva en un pH neutro que varía de seis a ocho.

Explicaciones de los enlaces de ejemplo

Ineficaz: esta oración está en tiempo presente y debe cambiarse al tiempo pasado. Además de los problemas tensos, la oración no le dice mucho al lector sobre lo que se entiende por el término efectivo. ¿Qué es exactamente una enzima eficaz? El autor debe ser específico y tratar de evitar términos genéricos como efectivo. Además, el autor nunca dice por qué se está realizando el experimento. ¿Por qué es tan importante la eficacia de las enzimas? ¿Qué hace que sea lo suficientemente importante como para ser estudiado? (regrese a la Muestra 1)

Tarifas: esta oración se refiere a lo que se hizo, pero apenas transmite información. El autor afirma que se analizaron diferentes muestras de enzimas, pero no menciona nada sobre el contenido de las muestras. ¿Se utilizó la misma enzima en todas las muestras? ¿Qué había en cada muestra y qué variaba en cada muestra? Además, ¿qué tiene que ver la absorción con la actividad enzimática? Esta correlación debe explicarse al lector. Un último detalle que debe incluirse es la longitud de onda de la luz que se utilizó en el espectrofotómetro. ¿Permaneció constante o también fue una variable? (volver a la Muestra 1)

Ocho: Esto es demasiado largo y detallado para ser un resumen, parece que fue extraído de la sección de métodos y materiales del artículo. No es necesario indicar las cantidades de enzima ni los niveles de pH. No es necesario incluir el número de muestras analizadas, ya que es solo información superflua que no es crucial para comprender el experimento en su conjunto. La información contenida en esta oración se puede extraer y reorganizar para decir que algunas muestras tenían un pH constante y concentraciones de enzimas variables y otras muestras tenían concentraciones de enzimas constantes y niveles de pH variables. Con los controles y las variables indicadas, puede pasar a sus resultados. (regrese a la Muestra 1)

Alto: esto es demasiado general, aunque transmite la información correcta. Al indicar los resultados, está bien utilizar números reales. En lugar de decir que la tasa de absorción fue alta, especifique qué tan alta en comparación con las muestras con tasas de absorción bajas. (volver a la Muestra 1)

Cantidades: un experimento nunca es definitivo ni positivo. Evite siempre decir que los resultados obtenidos son correctos o definitivos. En su lugar, simplemente diga que los datos respaldaron o no respaldaron su hipótesis. (volver a la Muestra 1)

Otros: Esta oración es clara y concisa, y le dice al lector por qué se llevó a cabo el experimento. Postula la pregunta de por qué algunas enzimas son más efectivas que otras y explica que el experimento se estableció para determinar qué causa estas diferencias. (regrese a la Muestra 2)

540 nm: esta oración presenta la enzima específica que se está estudiando y cómo se estudió. La longitud de onda de la luz utilizada en el espectrofotómetro también se especificó para indicarle al lector que la longitud de onda no era una de las variables manipuladas en el experimento. (regrese a la Muestra 2)

Niveles: está bien usar pronombres personales en abstracto y esta oración usa & quot nosotros & quot de manera efectiva. También define lo que se hizo sin entrar en grandes detalles. Los controles y las variables se indican de forma clara y sucinta para que el lector sepa qué factores se están probando para determinar la productividad de la enzima. (regrese a la Muestra 2)

Resumen claro: estas dos oraciones combinan los resultados con la conclusión. Esto ayuda a que las conclusiones extraídas de los resultados sean muy claras para el lector. El autor también indicó números concretos en los resultados para que el lector sepa cuánto cambiaron las tasas de absorción en cada muestra. (regrese a la Muestra 2)

Todas las citas son de Pechenik, Jan A. Una breve guía para escribir sobre biología. págs. 54-102, Tufts University: Harper Collins College Publishers. 1993.


Resultados y datos experimentales

Metal utilizado __________________________________________

Prueba 1 Prueba 2
Masa de metal (g)
Temperatura del laboratorio ( ° C)
Temperatura de laboratorio (K) T
Volumen de H2 gas producido (mL)
Volumen de H2gas producido (L) V
Presión en laboratorio (atm) PAG


Práctica guiada - La leche me enferma Actividad previa al laboratorio

A los estudiantes se les proporcionará Lectura Pre-Laboratorio y Preguntas: Laboratorio de La Leche Me Enferma. El folleto previo al laboratorio revisa el proceso de las enzimas que trabajan en el sistema digestivo, específicamente el papel de la lactasa para descomponer la lactosa (azúcar de la leche) en glucosa y galactosa. Se anima a los estudiantes a que guarden sus notas de clase como referencia para repasar los términos asociados con las enzimas y las reacciones químicas en el cuerpo humano. La información de antecedentes reforzará las notas de la clase que se acaban de presentar y proporcionará detalles del procedimiento para la investigación de laboratorio del mañana.

Los estudiantes revisarán sus respuestas a la actividad de lectura previa al laboratorio en un intercambio de parejas. Una vez que la clase haya tenido la oportunidad de discutir sus respuestas con su compañero, cada pareja elegirá un portavoz para compartir una de sus respuestas en una actividad tipo palomitas de maíz que rotará por el salón para revisar las respuestas correctas a las preguntas previas al laboratorio.

El maestro revisará las preguntas del artículo que los estudiantes identifiquen como difíciles en una discusión de grupo completo para asegurarse de que todos los estudiantes hayan tenido la oportunidad de registrar las respuestas correctas en preparación del experimento de laboratorio en la siguiente lección.

Muestra de trabajo del estudiante - Actividad previa al laboratorio- Después de revisar el trabajo de los estudiantes, fue evidente que los estudiantes lograron completar las preguntas que correspondían con las declaraciones exactas en la lectura previa al laboratorio, pero tuvieron dificultades para transferir la información a modelos. Este análisis revelador ha llevado a una revisión de clase más detallada a medida que se acerca la prueba unitaria.


Ley de tarifas

En la mayoría de los casos, la velocidad de reacción depende de la concentración de los diversos reactivos en el tiempo t. Por ejemplo, en una concentración más alta de todos los reactivos, los reactivos chocan con más frecuencia y dan como resultado una reacción más rápida. La relación entre la velocidad de reacción ν (t) y las concentraciones se define como la ley de tarifas. Y la ley de velocidad para la reacción química general aA + bB --------------- & gt cC + dD es:

Donde k es la constante de velocidad y la potencia xey es la pedido de la reacción con respecto a los reactivos A y B. La ley de velocidad debe determinarse experimentalmente y no puede deducirse solo de la estequiometría de una reacción química equilibrada.


10.3: Preguntas previas al laboratorio - Biología

Nombre ______________________________________ Sección _____

Preguntas previas al laboratorio: microscopía

1. Enumere 3 contribuciones de Antony von Leeuwenhoek y 3 contribuciones de Robert Hooke a la
ciencia de la biología?

2. Describe brevemente con tus propias palabras cómo funciona un microscopio de contraste de fase. Para que sirve

3. Describa brevemente con sus propias palabras cómo funciona un microscopio electrónico de transmisión.

4. Describa brevemente con sus propias palabras cómo funciona un microscopio electrónico de barrido.

5. Enumere la función de las siguientes partes del microscopio.

Cuerpo & Quottube & quot _________________________________________________________

Platina mecánica ____________________________________________________

Perillas de escenario mecánicas _______________________________________________

Clips de escenario) ________________________________________________________

Pieza de nariz giratoria __________________________________________________

Diafragma del iris _______________________________________________________

Iluminador (fuente de luz) ______________________________________________

Lentes objetivo _____________________________________________________

Mando de ajuste grueso _______________________________________________

Perilla de ajuste fino _________________________________________________

6. ¿Qué se entiende por aumento total?

7. ¿Qué se entiende por parfocal?

8. Utilizando los recursos disponibles para usted, encontrar y adjuntar una microfotografía representativa de un
espécimen biológico tomado por microscopio óptico compuesto, un TEM (transmisión de electrones
microscopio) y un SEM (microscopio electrónico de barrido). Esto no significa una imagen del
microscopios.

10. Enumere al menos tres tipos diferentes de microscopios que utilizan los biólogos para estudiar las células.


10.3 y 10.4 Acciones reflejas y el cerebro NUEVA especificación de biología de GCSE

¡Hola! Bienvenido a mi tienda. Tómese un momento para navegar. Creo actividades divertidas e interactivas dirigidas por alumnos para KS3, GCSE y biología de nivel A. Como maestra de secundaria, he implementado en mis recursos las cosas que siempre quise en mis lecciones. Es decir, recursos atractivos y de alta calidad que realmente impactan el aprendizaje. Y esto debe hacerse con el menor esfuerzo posible: la eficiencia es primordial. Es por eso que encontrará todos mis recursos de lecciones en un solo archivo, ¡listo para usar!

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El contenido es para la nueva especificación de biología AQA GCSE.
El plan de lección de GCSE Biología / presentación de PowerPoint contiene todas las actividades y recursos (¡en un archivo!) Para lograr los siguientes objetivos de aprendizaje:

1) ¿Qué son los reflejos? Inicio, cuatro fotografías, una palabra, actividad de clasificación voluntaria o involuntaria.

2) Cómo funcionan los reflejos: hoja práctica con método y tabla de resultados enlace de video con preguntas para responder del video Tarea de escritura extendida hacer coincidir la parte del cuerpo involucrada en una acción refleja con su función poner en orden las partes de una acción refleja

3) Por qué los reflejos son importantes en su cuerpo: video y tarea de escritura extendida como arriba

4) Lo que hacen las áreas principales del cerebro: codificar por colores y anotar regiones del cerebro con sus funciones de coordinación y aprendizaje hoja de planificación práctica y hoja de análisis plenaria: emparejar la parte del cerebro con lo que es responsable

5) Cómo los científicos descubren la estructura y las funciones del cerebro: preguntas de la hoja de análisis práctico del enlace de video de inicio

6) Cómo funciona la ciencia: instrucciones prácticas, hoja de planificación y hoja de trabajo de análisis con una tabla para completar (imprima diapositivas en A4 para redacción práctica), gráfico para trazar los resultados y preguntas de seguimiento.

Todas las actividades se completan con respuestas totalmente integradas en PowerPoint para la autoevaluación o entre pares.

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Un paquete es un paquete de recursos agrupados para enseñar un tema en particular, o una serie de lecciones, en un solo lugar.

Homeostasis: principios de la homeostasis, la estructura y función del sistema nervioso, acciones reflejas, el cerebro, el ojo y problemas comunes del ojo

Seis lecciones completas sobre homeostasis creadas para la nueva especificación de biología de GCSE. Las lecciones incluyeron: 10.1 Principios de la homeostasis 10.2 La estructura y la función del sistema nervioso 10.3 Acciones reflejas 10.4 El cerebro 10.5 El ojo 10.6 Problemas comunes con el ojo


Pre-laboratorio de Leaf Disk

Siga el enlace a continuación para ver un video del experimento que realizaremos en clase:

Laboratorio de fotosíntesis de discos de hojas flotantes

Adaptado de Leaf Disk Lab de Brad Williamson (http://www.elbiology.com/labtools/Leafdisk.html)

Introducción La luz es parte de un continuo de radiación u ondas de energía. Las longitudes de onda de energía más cortas tienen mayores cantidades de energía. For example, high-energy ultraviolet rays, with wavelengths of approximately 1 nanometer (nm) to 380 nm, can harm living tissues due to the large amount of energy they carry. Wavelengths of light within the visible part of the light spectrum power fotosíntesis. The visible light spectrum is from about 400 to 750 nm (1 billionth of a meter). Only visible light, with its intermediate wavelengths, has enough energy to cause chemical change without destroying biological molecules. The short, high frequency waves of gamma rays (10-5 nm) have too much energy and break the hydrogen bonds found within biological molecules such as proteins and nucleic acids like DNA. The longer waves of heat, microwaves and radio waves (103 nm to 103 meters) do not possess enough energy and are absorbed by the water molecules in a plant.

When visible light is absorbed by leaf pigments, such as chlorophyll a or b, during the light reactions of fotosíntesis, electrons within each photosystem are boosted to a higher energy level and replaced by the splitting of H2O molecules. O2 gas is released as a byproduct of splitting water. The energy contained in the excited electrons is then used to produce ATP and NADPH, two high-energy molecules. The energy stored in the bonds of these high-energy molecules is then used to break apart and recombine carbon dioxide (CO2) into organic carbon molecules (i.e. glucose) in the light-independent reactions. Plants can then either break down the glucose immediately to release the captured energy in a process called respiración, or can store the glucose molecules as starch and cellulose for later use.

Leaf disks float, normally. When the air spaces are infiltrated with a solution of water, the overall density of the leaf disk increases and the disk sinks. The infiltration solution includes a small amount of sodium bicarbonate (NaHCO3) thus enabling the bicarbonate ion to serve as the carbon source for photosynthesis. As photosynthesis proceeds, oxygen is released into the interior of the leaf, which changes its buoyancy causing the disks to rise. Since cellular respiration is taking place at the same time within the leaf, consuming some of the oxygen and glucose generated by photosynthesis, the rate that the disks rise is an indirect measurement of the neto rate of photosynthesis. In this lab, you will measure the neto rate of photosynthesis for several plants under both light and dark conditions.

On your blog, answer the following PRELAB questions:

1. Why is baking soda added to the water for this experiment? For what purpose is it used in this experiment?
It is added to facilitate photosynthesis. It is also used to increase the density of the leaf disk.

2.What causes the leaf disks to float to begin with, and why do we need to use a syringe to make them sink?
Air spaces causes the leaf disks to float. Since the water weighs down the leaves, syringe is needed.

3. What causes the leaf disks to rise? What process are we taking advantage of, and how?
As leaves create oxygen through photosynthesis, leaves rise. Since photosynthesis creates oxygen, it lowers the density of leaves.

4. If the leaf disks rise more quickly, what does that tell you about the rate of photosynthesis? ¿Por qué?
It means the rate of photosynthesis was quicker because there is more oxygen, which means the process was quicker.

5. Why do the leaf disks sink when they are put in a dark environment? Explicar.
It sinks because the leaf disks cannot do photosynthesis. Since it can’t process photosynthesis, oxygen cannot be created.

6. If we were to use three differently colored light filters (1) Dark blue = 425nm, 2) Green = 550nm, 3) Orange = 675nm light only), which wavelength of light would cause the leaves to rise the fastest in 5 minutes? Which would cause the leaves to rise the slowest? Use the graph below to justify your response.
Dark blue would be the fastest because it lets the most amount of energy into the leaf. Then it is orange and green. This is because their amount of light energy decreases. Green light will be reflected off because the plant itself is green.

BONUS QUESTION: If both photosynthesis and cellular respiration are occurring at the same time, why can we determine that the leaves float primarily due to the production of O2 gas, and not CO2 gas bubbles?


Biology Lab Questions

Safety glasses or safety goggles should always be worn inside a chemistry lab to protect your eyes.

2. Should you add acid to water or water to acid?

3. Where should you dispose of broken glass?

They should be placed in the proper container for the disposal of sharps. They should never be tossed into a regular trash can.

4. What should you do if you spill a chemical on your hand?

You should immediately wash your hands with copious amounts of water and antibacterial soap.

Exercise 1: What Is It?

A chemical laboratory contains special equipment to use while you are performing an experiment. Locate each of the items pictured on the following pages in your lab kit, and place a check mark in the appropriate place when you find it. After you have completed this, sketch a picture and name any additional items that are located in your lab kit, classroom, or home that are likely to be useful for you in completing these labs.

50 mL ____x_____

Stir Stick__x_______

250 mL ___x______ Graduated Cylinder

Test Tube ___x______ Pipette ___x______ Petri Dish ___x______

Include your Drawings Here:

Experiment 1: Neutralization of Acids and Bases

In this experiment, you will learn how to properly neutralize and dispose of acidic and basic solutions.

Materiales5 mL 4.5% Acetic Acid (vinegar), C2H4O2 (1) 10 mL Graduated Cylinder 8 Litmus Test Strips (Neutral) Permanent Marker 2 Pipettes 1 g Sodium Bicarbonate (baking soda), NaHCO3 4 Weigh Boats *Water*You Must Provide

1. Use the permanent marker to label three of the weigh boats as A – C.

2. Measure and pour approximately 5 mL of water into weigh boat “A”.

3. Add 0.5 g sodium bicarbonate to weigh boat “B”.

4. Measure and pour approximately 5 mL of water into weigh boat “B”. Gently pipette the solution up and down until the sodium bicarbonate is fully dissolved in the water.

5. Measure and pour 5 mL acetic acid solution to weigh boat “C”.

6. Use the litmus test strips to determine if the substances in weigh boats A – C are acidic or basic. This is accomplished by briefly dipping an unused strip of the litmus paper in each of the weigh boats. Record your color results in Table 2.

7. Pipette 1 mL of the sodium bicarbonate solution from weigh boat “B” into weigh boat “C”. Gently swirl weigh boat “C” to mix.

8. Develop and record a hypothesis regarding the pH of weigh boat “C”. Record this in the Post-Lab Questions section.

9. Test the pH of weigh boat “C” using new litmus paper. Record your result in Table 3.

10. Repeat Step 9 four more times until all the sodium bicarbonate has been added to weigh boat “C”.

Table 2: Initial Litmus Test Results
Weigh BoatChemical ContentsLitmus ResultsAdditional Observations
A
B
C
Table 3: Neutralization of an Acid
Amount of BaseLitmus Result
1 mL
2 mL
3 mL
4 mL
5 mL

Post-Lab Questions

1. State your hypothesis (developed in Step 8) here. Be sure to include what you think the pH will be, and why.

2. What is a neutralization reaction?

3. When might neutralization reactions be used in a laboratory setting?

4. At what point was the acetic acid in weigh boat “C” neutralized?

5. What do you think would have been the results if a stronger solution of sodium bicarbonate was used? Would it take more or less to neutralize the acid? What about a weaker concentration of sodium bicarbonate?

Pre-lab Questions

1. List the atomic numbers for each of the following elements.

Planchar_________Oxígeno_________
Calcio_________Nitrógeno_________
Potasio_________Hidrógeno_________

2. What determines if a bond is polar?

3. Use the periodic table to determine if potassium chloride (KCl) formed through covalent or ionic bonds? Use evidence from the Introduction to support your answer.

4. Research two common, polar molecules and two common nonpolar molecules. Draw their molecular structure and explain how the structure makes each molecule polar or non-polar.

Experiment 1: Slime Time

Inks can be polar or non-polar. Polar solvents pick up polar inks, while non-polar solvents pick up non-polar inks. In this experiment, you will use inks to identify slime and silly putty as polar or non-polar. You will also use paper chromatography to verify the inks are correctly identified as polar or non-polar.

Materiales(1) 250 mL Beaker 5 mL 4% Borax Solution, Na2B4O7·10H2O Dry Erase Marker (1) 10 mL Graduated Cylinder (1) 100 mL Graduated Cylinder Filter Paper (Disk) Filter Paper (Square) 0.5 g Guar Gum Highlighter Permanent Marker 1 Popsicle StickSilly Putty® Ruler Wooden Stir Stick Uni-ball® Roller Pen *Distilled or Tap Water *Newspaper *Notebook Paper *Scissors *You Must Provide

Part 1: Making Slime

1. Weigh out 0.5 g of guar gum into a 250 mL beaker.

2. Measure 50.0 mL of distilled water into a 100 mL graduated cylinder and pour it into the 250 mL beaker that contains the guar gum.

3. Rapidly stir the mixture with a wooden stir stick for three minutes, or until the guar gum is dissolved.

4. Measure 4.00 mL of a 4% Borax solution into a 10 mL graduated cylinder and add it to the guar gum and water.

5. Stir the solution until it becomes slime. This will take a few minutes. If the slime remains too runny, add an additional 1.0 mL of the 4.0% Borax solution and continue to stir until the slime is the slightly runny or gooey.

6. Once you are satisfied with the slime, pour it into your hands. Be sure not to drop any of it on to the floor.

7. Manipulate the slime in your hands. Write down observations made about how slime pours, stretches, breaks, etc. in Part 1 of the Data section. PRECAUCIÓN: Slime is slippery and if dropped it can make the work area slick.

8. Place the slime back into the beaker and WASH YOUR HANDS.

Part 2: Slime and Putty Ink Tests

1. On a piece of notebook paper make one 20 – 25 mm long mark of each of the inks you are testing (permanent marker, highlighter, Dry Erase, and Uni-ball® Roller Pen). Space the marks at least one inch apart. Use a pencil to label each mark with its description.

una. Water soluble inks include those in highlighters and certain pens.

B. Water insoluble inks include those in a permanent pen/markers, newsprint, and a dry-erase markers.

2. While the inks are drying, select a passage or a picture in the newspaper to test with the slime.

3. Develop a hypothesis stating whether or not you believe the slime produced in Part 1 will pick up newsprint ink. Record this hypothesis in the Post-Lab Questions section. Then, break off a small piece of slime that is 3 – 5 cm in diameter. Gently place this piece on top of the newspaper print, then carefully pick it up again.

4. Observe and record in Table 1 whether or not the ink was picked up onto the slime.

5. Break off another small piece of slime. Once the inks from Step 1 have dried gently place the slime on top of the first spot on the notebook paper, then carefully pick it up. Repeat this for each of the inks. Observe and record which inks were picked up (dissolved) by the slime in Table 1.

6. Repeat this ink testing two more times for accuracy.

7. Hypothesize which inks the silly putty will pick up in the Part 2 of the Data section. Then, perform the ink tests with the Silly Putty® according to the procedure outlined in Steps 5 – 6.

Part 3: Chromatography of Ink Samples

Figura 7:Chromatography apparatus for Procedure Part 3.

1. Use a pencil or scissors to poke a pequeña hole in the center of a piece of filter paper (see Figure 7).

2. Spot the filter paper evenly spaced approximately 2 cm from the small hole with the two insoluble inks and the two soluble inks that were used in Part 2, Step 1.

3. Obtain a ½ piece of filter paper. Fold the paper in half several times so that it makes a narrow wick.

4. Insert the wick into the hole of the spotted paper so that it is above the top of the filter paper by approximately 2 cm.

5. Fill a 250 mL beaker ¾ full with water.

6. Set the filter paper on top of the beaker so that the bottom of the wick is in the water. The paper should hang over the edge of the beaker with the spotted side up.

7. Allow water to travel until it is approximately 1 cm from the edge of the filter paper. Remove the filter paper from the beaker.

8. Observe which inks moved from where they were originally spotted. Record your observations in Part 3 of the Data section.

Table 1: Results of Ink Testing for Silly Putty®
Name of InkPicked up (dissolved)Did not pick up
Trial 1Trial 2Trial 3Trial 1Trial 2Trial 3
Newsprint
Highlighter
Uni-ball® Roller Pen
Marcador permanente
Dry Erase Marker

· Hypothesis for Silly Putty® (Procedure Part 2, Step 7):

· Observations of inks following chromatography:

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis regarding the slime’s ability to pick up newsprint ink here.

2. Did the slime pick up water soluble or water insoluble inks? From these results, what can you conclude about the polarity of slime molecules?

3. Explain how you determined your hypothesis about whether or not silly putty would pick up water soluble inks. Was your hypothesis correct?

4. Were the inks you used properly classified as soluble and insoluble? Explica tu respuesta.

Pre-Lab Questions

1. Nitrogen fixation is a natural process by which inert or unreactive forms of nitrogen are transformed into usable nitrogen. Why is this process important to life?

2. Given what you have learned about the hydrogen bonding shared between nucleic acids in DNA, which pair is more stable under increasing heat: adenine and thymine, or cytosine and guanine? Explicar por qué.

3. Which of the following is not an organic molecule methane (CH4), fructose (C6H12O6), rosane (C20H36), or ammonia (NH3)? ¿Cómo lo sabes?

Experiment 1: Testing for Proteins

The protein molecules in many foods provide the amino acid building blocks required by our own cells to produce new proteins. To determine whether a sample contains protein, a reagent called Biuret solution is used. Biuret solution contains copper ions. However, the chemical state of the copper ions in Biuret solution causes them to form a chemical complex with the peptide bonds between amino acids (when present), changing the color of the solution. Biuret solution is normally blue, but changes to pink when short peptides are present and to violet when long polypeptides are present.

Figura 6:Biuret solution only is located on the far left side of the image (blue). Note the transition from blue to violet as proteins are added to the solution, causing the solution to transition from blue to violet.
Materiales(2) 250 mL Beakers 25 Drops Biuret Solution, H2NC(O)NHC(O)NH (1) Knox® Gelatin Packet 5 mL 1% Glucose Solution, C6H12O6 (1) 10 mL Graduated Cylinder (1) 100 mL Graduated Cylinder Permanent Marker 5 Pipettes5 Test Tubes (Plastic) Test Tube Rack 5 mL Unknown Solution *Tap Water *Hot Water *Egg White *You Must Provide

1. Label five test tubes 1, 2, 3, 4 and 5.

2. Prepare your testing samples as follows:

una. Mix one egg white with 25 mL water in a 250 mL beaker to create an albumin solution. Pipette 5 mL of this solution into Test Tube 1.

B. Mix the packet of Knox® gelatin with 50 mL hot water in a second 250 mL beaker. Stir until dissolved. Pipette 5 mL of this solution into Test Tube 2.

3. Pipette 5 mL of the 1% glucose solution into Test Tube 3.

4. Use the 10 mL graduated cylinder to measure and pour 5 mL of water into Test Tube 4.

5. Pipette 5 mL of the “Unknown Solution” into Test Tube 5.

6. Record the initial color of each sample in Table 1.

7. Develop a hypothesis regarding what you predict will happen when Biuret solution is added to Tubes 1 – 4. Record your hypothesis in the Post-Lab Question section. Then, pipette five drops of Biuret solution to each test tube (1 – 5). Swirl each tube to mix.

8. Record the final color in Table 1. Note: Protein is present in the sample if a light purple color is observed.

Table 1: Testing for Proteins Results
MuestraInitial ColorFinal ColorProtein Present
1 – Albumin Solution
2 – Gelatin Solution
3 – Glucose
4 – Water
5 – Unknown

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis about what will happen when Biuret solution is mixed with the solutions from test tubes 1, 2, 3, and 4 here. Be sure to use scientific reasoning to support your hypothesis.

2. Write a statement to explain the molecular composition of the unknown solution based on the results obtained during testing with each reagent.

3. Diet and nutrition are closely linked to the study of biomolecules. How should you monitor your food intake to insure the cells in your body have the materials necessary to function?

4. The molecule pictured below produced a blue color when tested with Benedict’s reagent, a yellow color when tested with IKI, and a violet color when tested with Biuret reagent. Based on the structure shown below and these chemical results, what kind of biomolecule is this?

Pre-Lab Questions

1. A concentration gradient affects the direction that solutes diffuse. Describe how molecules move with respect to the concentration.

2. How does the size of a solute affect the rate of diffusion? Consider the size and shape of a molecule in your response.

3. Does polarity affect diffusion? Explain your answer using scientific principles.

Experiment 1: Diffusion through a Liquid

In this experiment, you will observe the effect that different molecular weights have on the ability of dye to travel through a viscous medium.

Materiales1 60 mL Corn Syrup Bottle, C12H22O11 Red and Blue Dye Solutions (Blue molecular weight = 793 g/mole Red molecular weight = 496 g/mole) (1) 9 cm Petri Dish (top & bottom halves)Ruler *Stopwatch *Tape *You Must Provide

1. Use clear tape to secure one half (either the bottom or the top half is fine) of the petri dish over a ruler. Make sure that you can read the measurement markings on the ruler through the petri dish. The dish should be positioned with the open end of the dish facing upwards.

2. Carefully fill the half of the petri dish with corn syrup until the entire surface is covered.

3. Develop a hypothesis discussing which dye you believe will diffuse faster across the corn syrup and why. Record this in the Post-Lab Questions section. Then, place a single drop of blue dye in the middle of the corn syrup. Note the position where the dye fell by reading the location of the outside edge of the dye on ruler.

4. Record the location outside edge of the dye (the distance it has traveled) every ten seconds for a total of two minutes. Record your data in Tables 1 and 2.

5. Repeat Steps 1 – 4 using the red dye, the second half of the petri dish, and fresh corn syrup.

Table 1: Rate of Diffusion in Corn Syrup
Time (sec)Blue DyeRed DyeTime (sec)Blue DyeRed Dye
10 70
20 80
30 90
40 100
50 110
60 120
Table 2: Speed of Diffusion of Different Molecular Weight Dyes
EstructuraPeso molecularTotal Distance Traveled (mm)Speed of Diffusion (mm/hr)*
Blue Dye
Red Dye

*Multiply the total distance diffused by 30 to get the hourly diffusion rate

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis from Step 3 here. Be sure to validate your predictions with scientific reasoning.

2. Which dye diffused the fastest?

3. Does the rate of diffusion correspond with the molecular weight of the dye?

4. Does the rate of diffusion change over time? ¿Por qué o por qué no?

5. Examine the graph below. Does it match the data you recorded in Table 2? Explain why, or why not. Submit your own plot if necessary.

Experiment 2: Concentration Gradients and Membrane Permeability

In this experiment, you will dialyze a solution of glucose and starch to observe:

· The directional movement of glucose and starch.

· The effect of a selectively permeable membrane on the diffusion of these molecules.

An indicator is a substance that changes color when in the presence of the substance it indicates. In this experiment, IKI will be used an indicator to test for the presence of starch and glucose.

Materiales(5) 100 mL Beakers 10 mL 1% Glucose Solution, C6H12O6 4 Glucose Test Strips (1) 100 mL Graduated Cylinder 4 mL 1% Iodine-Potassium Iodide, IKI 5 mL Liquid Starch, C6H10O5 3 Pipettes 4 Rubber Bands (Small contain latex, handle with gloves on if allergic)*Stopwatch *Water *Scissors *15.0 cm Dialysis Tubing *You Must Provide *Be sure to measure and cut only the length you need for this experiment. Reserve the remainder for later experiments.
¡Atención!Do not allow the open end of the dialysis tubing to fall into the beaker. If it does, remove the tube and rinse thoroughly with water before refilling with a starch/glucose solution and replacing it in the beaker.
Nota:· Dialysis tubing can be rinsed and used again if you make a mistake.· Dialysis tubing must be soaked in water before you will be able to open it up to create the dialysis “bag”. Follow the directions for the experiment, beginning with soaking the tubing in a beaker of water. Then, place the dialysis tubing between your thumb and forefinger and rub the two digits together in a shearing manner. This should open up the “tube” so you can fill it with the different solutions.

1. Measure and pour 50 mL of water into a 100 mL beaker. Cut a piece of dialysis tubing 15.0 cm long. Submerge the dialysis tubing in the water for at least 10 minutes.

2. Measure and pour 82 mL water into a second 100 mL beaker. This is the beaker you will put the filled dialysis bag into in Step 9.

3. While the dialysis bag is still soaking, make the glucose/sucrose mixture. Use a graduated pipette to add five mL of glucose solution to a third beaker and label it “Dialysis bag solution”. Use a different graduated pipette to add five mL of starch solution to the same beaker. Mix by pipetting the solution up and down the pipette six times.

4. Using the same pipette that you used to mix the dialysis bag solution, remove two mL of that solution and place it in a clean beaker. This sample will serve as your positive control for glucose and starch.

una. Dip one of the glucose test strips into the two mL of glucose/starch solution in the third beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose test strip in Table 3. This is your positive control for glucose.

B. Use a pipette to transfer approximately 0.5 mL of IKI to into the two mL of glucose/starch solution in the third beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose/starch solution in the beaker in Table 3. This is your positive control for starch.

5. Using a clean pipette, remove two mL of water from the 82 mL of water you placed in a beaker in Step 2 and place it in a clean beaker. This sample will serve as your negative control for glucose and starch.

una. Dip one of the glucose test strips into the two mL of water in the beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose test strip in Table 3. This is your negative control for glucose.

B. Use a pipette to transfer approximately 0.5 mL of IKI to into the two mL of water in the beaker. After one minute has passed, record the final color of the water in the beaker in Table 3. This is your negative control for starch.

Note: The color results of these controls determine the indicator reagent key. You must use these results to interpret the rest of your results.

6. After at least 10 minutes have passed, remove the dialysis tube and close one end by folding over 3.0 cm of one end (bottom). Fold it again and secure with a rubber band (use two rubber bands if necessary).

7. Make sure the closed end will not allow a solution to leak out. You can test this by drying off the outside of the dialysis bag with a cloth or paper towel, adding a small amount of water to the bag, and examining the rubber band seal for leakage. Be sure to remove the water from the inside of the bag before continuing.

8. Using the same pipette which was used to mix the solution in Step 3, transfer eight mL of the solution from the Dialysis Bag Solution beaker to the prepared dialysis bag.

Figura 4:Step 9 reference.

9. Place the filled dialysis tube in beaker filled with 80 mL of water with the open end draped over the edge of the beaker as shown in Figure 4.

10. Allow the solution to sit for 60 minutes. Clean and dry all materials except the beaker with the dialysis bag.

11. After the solution has diffused for 60 minutes, remove the dialysis tube from the beaker and empty the contents into a clean, dry beaker. Label it dialysis bag solution.

12. Test the dialysis bag solution for the presence of glucose and starch. Test for the presence of glucose by dipping one glucose test strip into the dialysis bag directly. Again, wait one minute before reading the results of the test strips. Record your results for the presence of glucose and starch in Table 4. Test for the presence of starch by adding two mL IKI. Record the final color in Table 4 after one minute has passed.

13. Test the solution in the beaker for glucose and starch. Use a pipette to transfer eight mL of the solution in the beaker to a clean beaker. Test for the presence of glucose by dipping one glucose test strip into the beaker. Wait one minute before reading the results of the test strip and record the results in Table 4. Add two mL of IKI to the beaker water and record the final color of the beaker solution in Table 4.

Table 3: Indicator Reagent Data
IndicatorStarch Positive Control (Color)Starch Negative Control (Color)Glucose Positive Control (Color)Glucose Negative Control (Color)
IKI Solution n/an/a
Glucose Test Stripn/an/a
Table 4: Diffusion of Starch and Glucose Over Time
IndicatorDialysis Bag After 1 HourBeaker Water After 1 Hour
IKI Solution
Glucose Test Strip

Post-Lab Questions

1. Why is it necessary to have positive and negative controls in this experiment?

2. Draw a diagram of the experimental set-up. Use arrows to depict the movement of each substance in the dialysis bag and the beaker.

3. Which substance(s) crossed the dialysis membrane? Support your response with data-based evidence.

4. Which molecules remained inside of the dialysis bag?

5. Did all of the molecules diffuse out of the bag into the beaker? ¿Por qué o por qué no?


Ver el vídeo: Answer Scheme Pre Lab 2: Plant Tissues (Julio 2022).


Comentarios:

  1. Grodal

    Lamento, eso, no puedo ayudar a nada, pero está seguro de que para usted le ayudará a encontrar la decisión correcta.

  2. Torrie

    En mi opinión no tienes razón. estoy seguro Lo sugiero para discutir.

  3. Kandiss

    Por favor, cuente más en detalle.

  4. Octe

    Despedirme de esto.

  5. Ruffe

    Estoy seguro de que te confundiste.

  6. Kumi

    Que linda frase

  7. Nezahualpilli

    No está claro para mí.

  8. Melampus

    el silencio ha llegado :)

  9. Taurr

    En mi opinión, admites el error. Entra lo hablamos. Escríbeme en PM, hablamos.



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